Maklumat

14.1: Sindrom Pendebungaan - Biologi

14.1: Sindrom Pendebungaan - Biologi


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Bunga telah berevolusi bersama dengan pendebunganya. Set ciri ini dipanggil a sindrom pendebungaan dan membolehkan saintis membuat inferens tentang pendebunga bunga tertentu. Di dalam Malva assurgentiflora bunga (Rajah (PageIndex{1})), debunga mempunyai pendarfluor UV.

Sindrom dan Vektor Pendebungaan

Walaupun fenotip bunga juga boleh dikaitkan dengan faktor persekitaran lain (cth. Peach et al. 2020), kita boleh menyambungkan sindrom pendebungaan kepada vektor debunga, kedua-dua biotik dan abiotik (lihat Jadual (PageIndex{1})).

Jadual (PageIndex{1}): Sindrom Pendebungaan (diadaptasi daripada Perkhidmatan Hutan AS).

Warna

Struktur

Wangian

Nektar atau Debunga

Angin

Kusam, perianth sering tiada atau berkurangan

Stigma berbulu besar, anter besar

tiada

Tiada nektar, sejumlah besar debunga

Burung

Merah dan merah jambu

Selalunya berbentuk tiub atau berbekam

tiada

Banyak nektar tersembunyi, debunga sederhana

lebah

Ungu, biru, kuning, putih, UV

Rata dan cetek atau tiub, dengan kawasan pendaratan

Manis, segar, lembut

Debunga selalunya melekit dan berbau wangi, biasanya terdapat nektar

kelawar

Putih, hijau kusam, atau ungu

Selalunya berbentuk mangkuk atau loket, anter menonjol

Hapak atau buah, kuat, dipancarkan pada waktu malam

Banyak nektar tersembunyi

pelanduk

Putih, merah jambu pucat atau ungu

Selalunya tiub atau berbekam, tiada pad pendaratan

Kuat dan manis, dipancarkan pada waktu malam

Banyak nektar tersembunyi, debunga terhad

rama-rama

Warna terang

Tiub, dengan pad pendaratan yang luas

Pengsan, segar

Banyak nektar tersembunyi, debunga terhad

Lalat

Merah gelap, ungu, coklat

Cetek, corong atau seperti perangkap

Kusut, reput

Tiada nektar, debunga sederhana

Contoh Ciri-ciri Sindrom Pendebungaan

Lebah, Lalat Seperti Lebah dan Rama-rama

Burung

Lalat dan Kumbang

Angin

Atribusi

Kandungan oleh Maria Morrow, CC-BY 4.0.


Abstrak

PREMIS KAJIAN:

Analisis pengaruh variasi temporal dalam faktor abiotik terhadap fenologi berbunga spesies hutan kering tropika tidak mempertimbangkan kemungkinan tindak balas spesies dengan bentuk pertumbuhan dan sindrom pendebungaan yang berbeza, sambil mengawal hubungan filogenetik antara spesies. Di sini, kami menyiasat hubungan antara fenologi berbunga, faktor abiotik, dan sifat fungsi tumbuhan, sambil mengawal hubungan filogenetik antara spesies, dalam komuniti hutan kering di Mexico.

KAEDAH:

Kami mencirikan fenologi berbunga (masa dan tempoh) dan sindrom pendebungaan 55 spesies pokok, 49 herba, 24 pokok renek, 15 liana dan 11 pokok anggur. Kami menguji pengaruh sindrom pendebungaan, bentuk pertumbuhan, dan faktor abiotik pada fenologi berbunga menggunakan kuasa dua terkecil umum filogenetik.

KEPUTUSAN UTAMA:

Kami mendapati hubungan antara tempoh berbunga dan masa. Bentuk pertumbuhan dikaitkan dengan masa berbunga, dan sindrom pendebungaan mempunyai hubungan yang lebih signifikan dengan tempoh berbunga. Variasi masa berbunga dalam komuniti dijelaskan terutamanya oleh pembolehubah abiotik, tanpa kesan filogenetik yang penting. Masa berbunga dalam liana dan pokok berkorelasi negatif dan positif dengan panjang siang, masing-masing.

KESIMPULAN:

Atribut fungsional, isyarat persekitaran dan filogeni berinteraksi antara satu sama lain untuk membentuk kepelbagaian corak berbunga. Pembezaan fenologi antara kumpulan spesies mendedahkan strategi berganda yang dikaitkan dengan bentuk pertumbuhan dan sindrom pendebungaan yang boleh menjadi penting untuk memahami kewujudan bersama spesies dalam komuniti tumbuhan yang sangat pelbagai ini.

Taburan temporal berbunga mempunyai pengaruh penting terhadap kejayaan pembiakan tumbuhan (Munguía-Rosas et al., 2011). Oleh itu, pemilihan yang kuat memihak kepada penyegerakan fenologi berbunga dengan keadaan abiotik dan biotik yang menggalakkan pendebungaan dan memihak kepada pembangunan benih boleh dijangka (Elzinga et al., 2007 Kudo et al., 2008). Fenologi berbunga di peringkat komuniti ialah spektrum tindak balas tumbuhan berbeza yang timbul daripada faktor eksogen (biotik dan abiotik) dan intrinsik (iaitu kekangan genetik dan filogenetik) (Rathcke dan Lacey, 1985 van Schaik et al., 1993). Sebagai contoh, tindak balas berbunga kepada faktor abiotik seperti ketersediaan air, suhu, dan tempoh hari (Borchert et al., 2004 Imaizumi dan Kay, 2006 Springate dan Kover, 2014) ditentukan oleh proses fisiologi yang berkaitan dengan keseimbangan hormon, kandungan air dalam tisu tumbuhan. , atau jumlah karbohidrat bukan struktur (Wilczek et al., 2010).

Dalam hutan tropika kering bermusim, air adalah sumber terhad sementara, dan variasi bermusim ini merupakan salah satu faktor abiotik yang paling penting yang mempengaruhi fenologi tumbuhan (van Schaik et al., 1993 Bullock, 1995). Walaupun kos pengeluaran bunga yang tinggi pada musim kemarau, pelbagai kumpulan tumbuhan berbunga di luar musim hujan dan sebaliknya, bertindak balas terhadap faktor lain seperti tempoh hari (Borchert et al., 2004) dan sinaran suria (Zimmerman et al., 2007). Akibatnya, dalam ekosistem ini adalah mungkin untuk melihat corak fenologi berbunga yang berbeza, yang boleh dikaitkan dengan strategi tumbuhan untuk menyimpan air dalam batang dan/atau akar atau untuk mengakses sumber air jauh di dalam tanah (Bullock, 1995 Borchert et al., 2004). ). Satu cara untuk mendokumentasikan tingkah laku fenologi yang berbeza dalam komuniti ialah membandingkan spesies dengan strategi pemerolehan sumber yang berbeza, seperti halnya spesies yang berbeza dalam bentuk pertumbuhan (Sarmiento dan Monasterio, 1983 Frankie et al., 2004 Marques et al., 2004). Walau bagaimanapun, setakat ini, kebanyakan maklumat sedia ada mengenai fenologi berbunga di hutan tropika kering bermusim adalah berdasarkan tumbuhan berkayu, terutamanya pokok (Bullock dan Solis-Magallanes, 1990 Singh dan Kushwaha, 2006).

Vektor pendebungaan adalah faktor lain yang dipengaruhi oleh masa berbunga, membentuk salah satu interaksi terpenting untuk kejayaan pembiakan tumbuhan (van Schaik et al., 1993 Bolmgren et al., 2003 Elzinga et al., 2007). Mutualisme ini mungkin mempengaruhi evolusi masa berbunga melalui persaingan untuk pendebunga, yang boleh menyebabkan pemilihan untuk pembungaan tak segerak (Mosquin, 1971 Bell et al., 2005), atau kemudahan di mana perkhidmatan pendebunga diperbaiki dengan pembungaan segerak (Rathcke dan Lacey, 1985 van. Schaik et al., 1993). Sistem pendebungaan mempunyai hubungan penting dengan tempoh berbunga, kerana ia menentukan masa yang tersedia untuk pendebungaan, yang penting untuk tumbuhan dan pendebunga. Walau bagaimanapun, tempoh berbunga telah diperiksa kurang daripada masa berbunga, dan beberapa kajian telah menganggap masa dan tempoh sebagai ciri tambahan untuk mengenali sindrom pendebungaan. Sebagai contoh, di hutan tropika kering bermusim, spesies yang didebungakan oleh lebah menghasilkan bunga semasa musim kemarau, manakala tumbuhan yang didebungakan oleh bunga rama-rama semasa musim hujan (Janzen, 2004 Frankie et al., 2004), dan tempoh berbunga akan lebih lama. dalam spesies berbunga semasa musim hujan.

Untuk memahami tindak balas spesies terhadap keadaan abiotik tempatan di hutan kering bermusim, adalah penting untuk mempertimbangkan kedua-dua bentuk pertumbuhan dan sindrom pendebungaan. Walau bagaimanapun, satu lagi faktor penting yang mempengaruhi fenologi berbunga ialah sejarah evolusi spesies (Davis et al., 2010). Kajian terdahulu telah menunjukkan isyarat filogenetik dalam corak berbunga (Bolmgren dan Cowan, 2008 Staggemeier et al., 2010 Davies et al., 2013 Lessard-Therrien et al., 2013 Du et al., 2015), bagaimanapun, dalam tropika kering bermusim hutan, subjek ini jarang diterokai, tetapi lihat Silva et al. (2011).

Kajian ini dijalankan di hutan tropika kering bermusim di wilayah floristik Lembangan Sungai Balsas, salah satu yang paling penting di Mexico kerana kepelbagaian tinggi dan perkadaran endemisme, menjadikannya kawasan pemuliharaan keutamaan pada skala global (Olson dan Dinerstein , 2002). Satu aspek yang ketara dalam hutan kering tropika ini ialah hujan tahunan yang rendah (sekitar 600 mm) dan musim kemarau yang panjang (8-9 bulan). Walaupun ketersediaan air adalah sumber yang terhad dalam jenis hutan ini pada skala seluruh dunia, adalah menarik untuk diperhatikan bahawa hanya sebahagian kecil (10-37%) spesies pokok yang mekar semasa musim hujan (Kushwaha et al., 2011). Corak ini mencadangkan kepelbagaian strategi. Oleh itu, mendokumentasikan tindak balas berbunga yang berbeza berhubung dengan ciri tumbuhan dan faktor persekitaran (cth., kerpasan atau tempoh hari) adalah penting untuk memahami strategi spesies berbeza untuk terus hidup dan wujud bersama dalam persekitaran terhad sumber ini. Di sini, kami mempertimbangkan dua sifat yang berpotensi berkaitan dengan fenologi berbunga-bentuk pertumbuhan dan sindrom pendebungaan-sementara secara serentak mengambil kira pengaruh hubungan filogenetik antara spesies. Pertama, kami menerangkan fenologi berbunga spesies dalam hutan kering tropika mengikut bentuk pertumbuhan dan sindrom pendebungaan mereka, dan kedua kami menangani soalan berikut: (1) Adakah terdapat hubungan bentuk pertumbuhan dan sindrom pendebungaan dengan masa dan tempoh berbunga? (2) Adakah hujan, panjang siang dan suhu mempengaruhi masa dan tempoh berbunga?


KEPUTUSAN

Pemerhatian pendebungaan

Kami mendokumenkan sejumlah 73 lawatan sepanjang 151.5 jam video: 24 jam C. incanus, 23 pada C. brittonianus, dan 26 pada C. mandonis. Ini termasuk lawatan burung kolibri dan kelawar ke setiap tiga spesies (Rajah 2). Walau bagaimanapun, terdapat perbezaan penting dalam kekerapan lawatan ini (Jadual 2). Pertama, lawatan kelawar adalah lebih biasa daripada lawatan burung kolibri di C. incanus (0.75 berbanding 0.18 lawatan/j), manakala sebaliknya berlaku dalam dua spesies lain (C. brittonianus: 0.30 lwn. 0.66 lawatan/j C. mandonis: 0.39 lwn. 0.81 lawatan/j). Kedua, jenis pendebunga berbeza dalam keberkesanannya dari segi peratusan lawatan di mana organ pembiakan dihubungi: merentas tiga spesies, burung kolibri menghubungi tiub anter dalam 24-40% daripada lawatan mereka, manakala kelawar menghubungi tiub anter dalam 100% lawatan mereka. Seperti yang diramalkan berdasarkan aspek paparan bunganya yang sepadan dengan sindrom pendebungaan burung kolibri (cth., bunga merah, sempit), burung kolibri paling kerap menghubungi tiub anter pada bunga merah. C. mandonis (Jadual 2).

Kadar lawatan (lawatan/j) Kadar hubungan Kepentingan relatif
burung kolibri kelawar burung kolibri kelawar burung kolibri kelawar
C. incanus 0.18 ± 0.08 0.75 ± 0.25 28.6% 100% 0.064 0.936
C. brittonianus 0.66 ± 0.38 0.42 ± 0.12 23.8% 100% 0.275 0.725
C. mandonis 0.81 ± 0.31 0.39 ± 0.22 40.0% 100% 0.455 0.545

Kami juga mendokumenkan perbezaan dalam kadar sentuhan antara spesies burung kolibri. Secara khusus, C. brittonianus dan C. mandonis bunga di Chuspipata dikunjungi oleh bintang depan tekak ungu yang agak besar (Coeligena violifer), yang menghubungi tiub anter 58.3% pada masa itu, dan sunangel tekak amethyst yang lebih kecil (Helingelus amethysticollis), yang menghubungi tiub anter hanya 8.3% pada masa itu. Mekanisme di mana burung kolibri ini gagal menghubungi tiub, dan dengan itu bertindak sebagai perompak nektar, berbeza antara spesies: C. biola sering memasuki bunga yang agak luas Centropogon mandonis pada sudut yang melampau (video dalam Lampiran S2a), manakala H. amethysticollis terlalu kecil, secara keseluruhan, untuk mencapai tiub anter dalam kebanyakan kes (video dalam Lampiran S2b). Centropogon incanus hanya dilawati oleh satu spesies burung kolibri (woodnymph ekor garpu, Thalurania furcata), yang menghubungi organ pembiakan dalam 28.6% lawatan.

Kelawar yang memakan nektar tidak dapat dikenal pasti dengan pasti daripada video, tetapi lawatan yang kami dokumentasikan mungkin dibuat terutamanya oleh Anoura geoffroyi. Kelawar dari genus ini boleh dibezakan daripada semua kelawar nektar yang lain kerana kekurangan uropatagium (membran kulit yang menyambungkan kaki), dan dalam klip video di mana kaki belakang kelihatan tiada yang mempunyai uropatagium (cth., video dalam Lampiran S2c). Sahaja Anoura diketahui berlaku di hutan pergunungan yang lebih tinggi, dan A. geoffroyi adalah yang paling biasa di atas 1500 m (Ortega dan Alarcón-D, 2008), walaupun A. caudifer atau A. cultrata mungkin juga berlaku di tapak kajian kami.

Bersama-sama, keputusan kami mencadangkan kecerunan pengkhususan pendebungaan dalam ketiga-tiga spesies peruvianid ini Centropogon, daripada pergantungan yang hampir lengkap pada pendebungaan kelawar kepada generalisasi yang seimbang (iaitu, pergantungan yang hampir sama pada burung kolibri dan pendebunga kelawar). Kelawar adalah pendebunga yang paling penting untuk kedua-dua bunga putih C. incanus (93.6% kepentingan pendebunga spesies ini Jadual 2) dan berbunga krim C. brittonianus (72.5% kepentingan), walaupun spesies terakhir juga mempunyai lebih daripada satu perempat daripada anggaran perkhidmatan pendebungaan yang disediakan oleh burung kolibri (Jadual 2). Kelawar adalah pendebunga yang kurang penting untuk bunga merah C. mandonis (54.5% kepentingan), dan spesies ini boleh dianggap sebagai generalis yang seimbang (Jadual 2).

Pemendapan debunga

Corak pemendapan debunga diurnal dan nokturnal sebahagian besarnya adalah kongruen dengan penemuan kami yang mempunyai kepentingan relatif berdasarkan kadar lawatan dan hubungan. Walaupun kami mendapati bahawa lebih banyak pemindahan debunga berlaku pada waktu malam (iaitu, kemungkinan besar oleh kelawar) berbanding pada siang hari (iaitu, kemungkinan besar oleh burung kolibri) pada setiap satu daripada tiga Centropogon spesies (Mann-Whitney U-ujian P nilai: 0.0012 [C. mandonis], 0.03515 [C. incanus], 0.0256 [C. brittonianus]), kita melihat bahawa pemendapan debunga harian masih membentuk lebih daripada satu pertiga daripada penerimaan debunga untuk C. mandonis, generalis seimbang (Jadual 3).

Hari Malam
Centropogon incanus 27.5 ± 7.7 (21.5% n = 6) 100.3 ± 23.4 (78.5% n = 8)
C. brittonianus 3.5 ± 1.2 (7.4% n = 6) 43.5 ± 9.4 (92.6% n = 6)
C. mandonis 73 ± 21.1 (36.3% n = 3) 128 ± 37.1 (63.7% n = 4)

Kuantifikasi ciri-ciri bunga

Analisis diskriminasi linear memisahkan ketiga-tiganya Centropogon spesies ke dalam kawasan morfoangkasa yang berbeza (Rajah 3). Ciri yang paling penting untuk memisahkan taksa dalam LD1 (yang menjelaskan 85.33% varians antara spesies dan terutamanya dipisahkan C. incanus daripada dua spesies lain) ialah lebar titik tengah tiub corolla, panjang tiub corolla, panjang anter, dan lebar bukaan corolla pada perpecahan antara lobus corolla dorsal dan ventral (iaitu, lebar corolla berfungsi) ini semua cenderung untuk menjadi lebih besar dalam C. incanus. Ciri yang paling penting untuk LD2 (yang menerangkan selebihnya varians dan terutamanya dipisahkan C. mandonis daripada C. brittonianus) ialah lebar pangkal tiub corolla dan lebar pedisel. Nilai sifat purata bagi setiap spesies disediakan dalam Jadual 1. Keputusan daripada ujian Tukey-Kramer menunjukkan bahawa dua ciri (pengeluaran benang sari dan lebar corolla di pangkalnya) berbeza merentasi semua spesies, tiga ciri (keseluruhan panjang corolla dan lebar terbesar bukaan corolla) adalah berbeza dengan ketara dalam C. incanus berhubung dengan dua spesies yang lain, dua sifat (jarak anter ke ruang nektar dan lebar tiub corolla pada titik tengahnya) adalah berbeza dengan ketara dalam C. brittonianus berhubung dengan dua spesies yang lain, dan lima ciri membezakan C. mandonis daripada dua spesies yang lain (lebar berfungsi bunga, panjang dan lebar sepal, lebar tiub corolla terbesar, dan lebar corolla pada puncaknya).

Kami menjana lengkung spektrum purata untuk tiub corolla bagi setiap spesies (Rajah 4). Kami mendapati itu C. incanus, spesies berbunga putih, memantulkan cahaya merentasi spektrum yang boleh dilihat, manakala bunga merah C. mandonis terutamanya mencerminkan melebihi 600 nm (iaitu, oren-merah) dalam spektrum yang boleh dilihat. Centropogon brittonianus, yang mempunyai bunga berwarna krim yang berbintik-bintik merah, adalah perantaraan antara kedua-dua spesies ini, seperti yang dijangkakan berdasarkan persepsi visual manusia sahaja. Walaupun fakta bahawa kedua-dua burung kolibri dan kelawar boleh melihat dalam bahagian UV spektrum (Winter et al., 2003), hanya yang kebanyakannya didebungakan kelawar. C. incanus mempunyai sebarang pemantulan UV (iaitu, <400 nm).

Kami mengukur panjang exsertion untuk 26 C. brittonianus dan 32 C. mandonis spesimen herbarium untuk mengkaji corak panjang exsertion dalam sympatry (dengan kedua-dua spesies) atau allopatry (dengan hanya C. mandonis—perhatikan bahawa C. brittonianus tidak pernah berlaku bersendirian Rajah 1). Menyatukan semua kawasan, pengeluaran stamen (min ± SE) adalah lebih besar untuk C. brittonianus (44.9 ± 0.60 mm) daripada untuk C. mandonis (29.9 ± 0.56 mm t57 = 8.35, P < 0.0001). Selaras dengan anjakan watak pembiakan, kami mendapati bahawa C. mandonis mempunyai exsertion yang jauh lebih pendek di kawasan yang bersimpati dengan C. brittonianus berbanding kawasan allopatri (28.2 ± 0.69 mm lwn. 31.2 ± 0.68 mm t30 = 3.02, P = 0.0005). Penyebaran panjang pemasukan benang sari ditunjukkan dalam Rajah 5.


Pembezaan Pekerja-Ratu (Biologi Lebah Asas untuk Penternak Lebah)

Perbezaan penting yang membawa kepada pembezaan pekerja-ratu bagi lebah ialah saiz dan orientasi sel larva yang sedang berkembang (lihat rajah di sebelah kiri dari Sammataro dan Avitabile). Lebah pekerja berkembang secara mendatar dalam sel heksagon dengan diameter lebih kurang 0.2 inci (5 mm) (5 sel/inci). Permaisuri mengukur pembukaan sel dengan kaki hadapannya sambil memeriksa setiap sel sebelum bertelur. Dron berkembang dalam sel mendatar yang lebih besar sedikit.

Ratu perempuan bagaimanapun berkembang dalam sel yang berorientasikan menegak (sesuai dipanggil a sel ratu). Ratu yang sedia ada sendiri meletakkan telur yang disenyawakan dalam struktur khas seperti cawan, dipanggil cawan ratu, berorientasikan menegak pada muka pekerja mendatar dan sikat dron atau, lebih biasa, pada margin bawah sikat. Apabila menetas, larva ratu berada dalam kedudukan menegak. Ketegangan permukaan dan penyempitan sel ratu yang sedang berkembang membantunya kekal pada tempatnya dan mengelakkannya daripada terjatuh. Sel ratu yang sedang berkembang dibesarkan secara menegak apabila larva membesar dan akhirnya menjadi berbentuk kacang sebagai sel bertutup dengan pupa di dalamnya. Seperti dalam induk pekerja dan drone, pupa yang sedang berkembang tidak makan walaupun makanan yang banyak ditinggalkan di dalam sel ratu (ia mungkin membantu dalam mengekalkan kelembapan dalaman sel).Ratu perlu mengunyah jalan keluar dari sel bertutup (seperti pekerja dan orang dewasa berdengung) selepas peringkat pupa terpendek (tujuh hari) daripada tiga anggota sarang dewasa.

Sumber:
Teks di atas diambil daripada The Mid-Atlantic Apiculture Research & Extension Consortium, Basic Bee Biology for Beekeepers Fact Sheet,Penerbitan MAAREC 1.4 Mac 2004. Anda boleh memuat turun lembaran fakta ini dan lain-lain di laman web MAAREC


Perbincangan

Lima spesies Diplomamorpha telah dikunjungi dengan kerap oleh pelbagai jenis rama-rama yang menetap, yang kemungkinan besar menghasilkan pendebungaan yang berkesan (Jadual 2). Dalam D. sikokiana, sumber nektar dan stigma masing-masing terletak 7.9 ± 0.6 dan 3.7 ± 0.8 mm dari pintu masuk bunga. Oleh itu, semua rama-rama dikumpulkan pada D. sikokiana berpotensi mencapai stigma dan menyebabkan pendebungaan yang berkesan. Dalam empat yang lain Diplomamorpha spesies, semua pelawat rama-rama mempunyai proboscises yang cukup panjang untuk mencapai stigma (Jadual 1 Rajah 4). Serangga diurnal melawat bunga pada frekuensi yang sangat rendah, dan beberapa serangga ini mempunyai proboscises yang terlalu pendek untuk mencapai stigma tiub. Diplomamorpha bunga. Keputusan ini mencadangkan bahawa Diplomamorpha bunga didebungakan dengan berkesan oleh rama-rama malam dan serangga diurnal kurang penting sebagai vektor debunga dalam Diplomamorpha.

Diplomamorpha mempunyai beberapa ciri bunga yang biasanya dikaitkan dengan pendebungaan dengan menetap rama-rama (van der Pijl & Dobson 1966 Proctor et al. 1996 Dobson 2006 Waser & Ollerton 2006). Perianth berwarna putih hingga kuning keputihan dengan nektar tersembunyi cetek di dalam kelopak, dan perbungaan terletak di hujung dahan (Waser & Ollerton 2006). Tumbuhan yang didebungakan oleh rama-rama malam lazimnya menarik pendebunga melalui bau bunga yang dipancarkan terutamanya pada waktu malam (Matile & Altenburger 1988 Nielsen et al. 1995 Kolosova et al. 2001). Pemantauan berurutan kami terhadap pelepasan bau dalam D. sikokiana mencadangkan bahawa bau bunga dikeluarkan hanya pada waktu malam, apabila rama-rama aktif. Oleh itu, pemerhatian ini memberikan sokongan tambahan untuk pendebungaan dengan menetap rama-rama Diplomamorpha spesis.

Secara keseluruhan, kami mengesan 16 sebatian meruap daripada sampel bau bunga D. sikokiana. Sejambak daripada D. sikokiana dikuasai oleh dua monoterpena, verbenone (17.6–46.3%) dan (E)-β-ocimene (11.56–26.8%). Verbenone jarang ditemui di kalangan bunga meruap, tetapi bau bunga Knautia arvensis (Dipsacaceae) didominasi oleh verbenone, yang merupakan kunci meruap yang menarik pendebunga rama-rama diurnal (Naumann et al. 1991). Berbeza, (E)-β-ocimene ialah salah satu komponen bau bunga utama dalam tumbuhan berbunga dengan mod pendebungaan yang pelbagai ( Knudsen et al. 2006). Tumbuhan yang dilawati oleh rama-rama menetap lazimnya menghasilkan benzenoid dan monoterpena dalam jumlah yang banyak dan kadangkala mempunyai seskuiterpena dan bahan meruap yang mengandungi nitrogen dalam jumlah yang kecil (Knudsen & Tollsten 1993 Dobson 2006). Ini juga berlaku untuk D. sikokiana, yang menghasilkan tiga benzenoid dan 12 monoterpena, secara kolektif terdiri daripada >80% daripada jumlah bau yang dikeluarkan, dan menghasilkan sesquiterpene (nerolidol) dalam jumlah yang kecil. Oleh itu, komposisi bau bunga D. sikokiana adalah ciri bunga yang didebungakan rama-rama. Nota khusus ialah Diplomamorpha geraniol yang dipancarkan, yang jarang ditemui dalam bunga rama-rama (Knudsen & Tollsten 1993 Dobson 2006). Walau bagaimanapun, Struthiola ciliata (Thymelaeaceae) juga dilawati oleh rama-rama menetap dan menghasilkan beberapa sebatian geraniolik (Makholela & Manning 2006). Di samping itu, geraniol adalah menarik atau sekurang-kurangnya elektro-antenografi aktif kepada pelbagai rama-rama yang menetap ( Landolt et al. 2001 Meagher 2002 Pophof et al. 2005 ).

Bunga yang didebungakan oleh rama-rama menetap juga sering dikunjungi oleh rama-rama ( Proctor et al. 1996 Sugiura & Yamazaki 2005 Dobson 2006 ), tetapi hawkmoth tidak diperhatikan pada mana-mana Diplomamorpha spesies yang dikaji dalam kajian ini. Satu sebab yang mungkin untuk ketiadaan hawkmoth adalah kerana sejambak Diplomamorpha bau bunga hanya menarik untuk rama-rama menetap. Walau bagaimanapun, semua sebatian bau bunga kecuali verbenone adalah perkara biasa dalam tumbuhan yang didebungakan oleh kupu-kupu (Knudsen & Tollsten 1993 Miyake). et al. 1998), mencadangkan bahawa komposisi bau mungkin tidak menjejaskan lawatan bunga oleh hawkmoth. Satu lagi sebab yang mungkin ialah hawkmoth jarang atau tiada di mana-mana Diplomamorpha spesies berlaku. Walau bagaimanapun, hawkmoth tidak semestinya luar biasa di tapak kajian kami (T. Okamoto, pers. obs., 2002–2006). Contohnya, tumbuhan biasa yang didebungakan oleh kupu-kupu, seperti Gardenia jasminoides (Rubiaceae), berlaku bersama Diplomamorpha di beberapa tapak kajian kami, menunjukkan bahawa ketiadaan kunjungan elang ke Diplomamorpha bunga bukan disebabkan oleh kekurangan hawkmoth. Penjelasan yang paling mungkin, tetapi belum teruji, ialah itu Diplomamorpha nektar tidak menarik perhatian hawkmoth dari segi kuantiti dan/atau kualiti. Secara umumnya, rama-rama memerlukan lebih banyak tenaga daripada rama-rama menetap kerana ia terbang dalam jarak yang jauh dan berlegar-legar apabila mencari bunga (Oliveira et al. 2004 ).

Kajian ini menunjukkan bahawa Diplomamorpha tumbuhan mempamerkan pelbagai ciri bunga yang dikaitkan dengan pendebungaan oleh rama-rama malam. Pemerhatian lapangan kami menunjukkan bahawa rama-rama menetap adalah pelawat bunga yang paling banyak dan mungkin pendebunga yang paling penting. Sesetengah Diplomamorpha spesies juga dilawati oleh lebah, tetapi lidah mereka yang agak pendek dan stigma yang tersembunyi Diplomamorpha bunga melarang pemindahan debunga yang berkesan oleh serangga ini. Sebab kekurangan penyesuaian bunga yang ketara kepada pendebungaan lebah tidak diketahui, tetapi mungkin berkaitan dengan perbezaan ciri tingkah laku antara lebah dan rama-rama. Lebah biasanya memaksimumkan kecekapan mencari makan dengan melawat sebahagian besar bunga yang terdapat pada setiap tumbuhan, yang biasanya mengakibatkan pemindahan debunga dalam tumbuhan (geitonogamy), terutamanya pada tumbuhan yang mempunyai banyak bunga kecil, seperti Diplomamorpha ( de Jong et al. 1993). Sebaliknya, beberapa kajian telah menunjukkan bahawa rama-rama malam menyebarkan debunga lebih jauh daripada pelawat harian (Miyake & Yahara 1998 Brunet & Sweet 2006) oleh itu, mereka mungkin menjadi pendebunga yang lebih baik dan menggalakkan penyeberangan sekurang-kurangnya dalam sesetengah tumbuhan.

Beberapa baris bukti menunjukkan bahawa pendebungaan sendiri mempunyai kesan negatif yang kuat terhadap pembiakan dalam Diplomamorpha. Kikuzawa (1989) menunjukkan bahawa dalam Daphne kamtchatica (Thymelaeaceae), penyumbatan stigma oleh debunga sendiri telah mengurangkan set benih dengan ketara dan mencadangkan bahawa ini berkemungkinan telah menggalakkan evolusi gynomonoecy dalam spesies ini. Tersumbat mungkin juga agak ketara Diplomamorpha kerana stigma terletak di bawah kepala sari dalam corolla yang sempit. Di samping itu, memandangkan setiap bunga hanya mengandungi satu ovul dan hanya memerlukan satu butir debunga, kawasan permukaan stigma adalah tidak seimbang besar dalam Diplomamorpha (Rajah 2), yang mungkin merupakan penyesuaian untuk meminimumkan kesan negatif penyumbatan. Oleh itu, penyesuaian bunga kepada pendebungaan rama-rama dalam Diplomamorpha tumbuhan mungkin telah berkembang untuk mengelakkan geitonogami dan tersumbat oleh debunga sendiri, yang biasanya disebabkan oleh lebah mencari makan secara optimum. Secara amnya, lebah merupakan pendebunga yang lebih cekap berbanding rama-rama dalam kebanyakan spesies tumbuhan kerana lebah membawa lebih banyak butiran debunga pada badannya berbanding rama-rama (Herrera 1987 Miyake & Yahara 1998). Lebah juga menyuburkan larva mereka dengan debunga dan nektar dan mempunyai rambut bercabang dan alat khusus untuk mengumpul debunga ( Proctor et al. 1996). Namun begitu, ovul tunggal masuk Diplomamorpha bunga mungkin disenyawakan dengan cekap oleh sedikit debunga yang dibawa oleh rama-rama. Penyiasatan lanjut ke atas corak penyebaran debunga oleh lebah dan rama-rama, ditambah dengan kajian tentang kesan pendebungaan sendiri, akan meningkatkan pemahaman kita tentang kepentingan evolusi pendebungaan rama-rama dalam tumbuhan yang menghasilkan sejumlah besar bunga hermafrodit berovul tunggal. .


Lampiran

Cukai, maklumat baucar dan nombor penyertaan GenBank (ITS, trnG-trnR, trnG-trnS) untuk 116 spesies yang digunakan dalam kajian ini. Perhatikan bahawa terdapat 23 spesies Ruellia termasuk dalam analisis 154-takson (Tambahan Rajah S1 dalam talian) yang bukan sebahagian daripada kajian Tripp (2007). Taksa ini tidak termasuk dalam Lampiran di bawah kerana beberapa pengenalpastian spesies masih tentatif, dan taksa ini adalah sebahagian daripada analisis lain yang sedang dijalankan oleh itu, kami menganggapnya sebagai data tidak diterbitkan. 23 ini termasuk tiga spesies yang kini diiktiraf sebagai milik Blechum, dan dua spesies Blechum yang baru-baru ini dipindahkan kepada atau ditubuhkan semula sebagai spesies Ruellia (McDade dan Tripp 2007). Walau bagaimanapun Blechum keturunan jelas bersarang di dalam Ruellia dan manuskrip yang akan datang meletakkan keseluruhan genus menjadi sinonim dengan Ruellia (Tripp et al., dalam semakan).


Minta kebenaran untuk menggunakan semula kandungan daripada tapak ini

Senarai Penyumbang xvii

Bahagian I Pengenalan 1

1 Konsep Umum dalam Ekologi Penyakit Invertebrata 3
Ann E. Hajek dan David I. Shapiro-Ilan

1.1.2 Istilah dan Ukuran 5

1.1.2.1 Prevalens/Insiden 5

1.1.2.2 Patogenisiti/Virulensi 5

1.1.2.3 Jangkitan/Infektiviti 6

1.1.2.6 Penyakit Epizootik dan Enzootik 7

1.1.2.7 Kitaran Jangkitan 8

1.1.2.8 R0 dan Ambang Ketumpatan Hos 10

1.1.3 Faktor-Faktor Yang Mempengaruhi Ekologi Penyakit Invertebrata 11

1.3 Mengapa Mengkaji Ekologi Penyakit Invertebrata? 13

1.4 Kandungan Buku ini 14

2 Kaedah untuk Mengkaji Ekologi Penyakit Invertebrata dan Patogen 19
Raquel Campos-Herrera dan Lawrence A. Lacey

2.2 Kaedah Tradisional untuk Mengkaji Penyakit 19

2.2.3.1 Mencari Serangga Yang Dijangkiti Menggunakan Kaedah Persampelan Entomologi Am 23

2.2.3.3 Kaedah Pengekstrakan 24

2.2.3.4 Persampelan Spora Bawaan Udara 24

2.2.3.6 Penyebaran Entomopatogen: Mark&ndashRelease&ndash Kaedah Tangkap Semula 25

2.3 Alat Molekul untuk Membantu dalam Pengesanan dan Kuantifikasi Patogen dan Kesannya terhadap Perumah 25

2.3.1 Penggunaan Protein: Permulaan Era Molekul dalam Patologi Invertebrata 26

2.3.2 Teknik Berdasarkan Asid Nukleik: Era &ldquoPre ]Omics&rdquo 27

2.3.3 Teknik Lanjutan: qPCR, NGS, dan Ketibaan ]Era Omics 31

2.4 Kaedah Tradisional Berbanding Molekul: Kelebihan dan Had 33

2.5 Memajukan Sempadan Ekologi menggunakan Patogen dan Penyakit 36

Bahagian II Asas Ekologi Patogen Invertebrata 49

3 Populasi Patogen 51
Leellen F. Solter dan James J. Becnel

3.2 Ciri-ciri Patogen 51

3.2.1 Invasif dan Infektiviti 52

3.2.1.2 Penubuhan Jangkitan dan Tropisme Tisu 54

3.2.2 Patogenisiti, Virulensi dan Replikasi Patogen 55

3.2.2.1 Faktor Virulensi 57

3.2.2.2 Pengecilan atau Peningkatan Virulensi 58

3.2.4 Patogen Obligat, Opportunistik dan Fakultatif 60

3.2.5.1 Penghantaran Mendatar 61

3.2.5.2 Penghantaran Menegak 62

3.2.5.3 Penghantaran Tidak Langsung 63

3.2.6 Kebolehubahan Genetik dan Potensi untuk Evolusi Bersama dengan Hos 64

3.2.6.1 Spesies dan Strain 64

3.3 Kesan Patogen terhadap Perkembangan dan Tingkah Laku Perumah 66

3.4 Populasi Patogen 67

3.4.1 Ketumpatan ]Patogen Bergantung 67

3.4.2 Ketumpatan ]Patogen Bebas 68

3.4.3 Kegigihan Patogen dalam Populasi Perumah 68

3.4.3.1 Jangkitan Kronik dan Penghantaran Menegak 69

3.4.3.2 Hos Alternatif dan Ganti/Perantaraan 69

3.4.3.3 Kemandirian Patogen dalam Kadaver dan Tisu Tumbuhan 70

3.4.3.4 Latensi dalam Populasi Hos 70

3.4.4 Kegigihan Peringkat Patogen dalam Persekitaran 71

3.5 Penyebaran dan Taburan Spatial Patogen 72

3.5.1 Faktor Fizikal: Angin dan Penyerakan Air 73

3.5.2 Faktor Biologi 73

3.5.3 Taburan Ruang 74

3.6 Interaksi Patogen 75

3.6.1 Interaksi dengan Agen Biologi lain 75

3.6.2 Interaksi dengan Racun Perosak dan Bahan Kimia lain 77

4 Populasi Tuan Rumah 101
Louela A. Castrillo

4.2 Faktor Hos Umum 103

4.2.1 Laluan Pemerolehan Patogen 103

4.2.2 Spesies Serangga, Peringkat Kehidupan, Umur dan Jantina 103

4.2.3 Kepadatan Penduduk 104

4.3 Halangan kepada Jangkitan Mikrob 105

4.3.1 Integumen Serangga 105

4.3.3.1 Membran Peritrofik dan Lamina Basal 108

4.3.3.2 Keadaan dalam Lumen Usus 108

4.3.3.3 Pengelupasan Sel Epidermis yang Dijangkiti 109

4.4 Pertahanan terhadap Jangkitan Mikrob 110

4.4.1 Sistem Imun Semula Jadi 110

4.4.1.1 Kekebalan Semula Jadi Konstitutif: Kekebalan Selular 110

4.4.1.2 Kekebalan Semula Jadi Konstitutif: Phenoloxidase 113

4.4.1.3 Kekebalan Semula Jadi Teraruh: Spesies Oksigen Reaktif 113

4.4.1.4 Kekebalan Semula Jadi Teraruh: Peptida Antimikrob 114

4.4.2 Mikrobiom ]Pertahanan Berasaskan 117

4.4.2.2 Simbion Intraselular 118

4.4.3 Pertahanan Tingkah Laku 119

4.4.3.1 Mengelak/Mengelak 120

4.4.3.2 Dandanan dan Tingkah Laku Kebersihan 121

4.4.3.3 Diet ]Berasaskan Pertahanan Profilaksis dan Terapeutik 122

4.4.3.4 Termoregulasi 123

4.4.3.5 Pemendapan Sebatian Antimikrob 123

4.5 Rintangan melalui Priming 124

5 Faktor Abiotik 143
Dana Ment, Ikkei Shikano dan Itamar Glazer

5.2 Unit Yang Masih Hidup 143

5.3 Faktor Abiotik yang Mempengaruhi Patogen Invertebrata 146

5.3.2 Kelembapan dan Kelembapan 152

5.3.3 Sinaran Ultraviolet 156

5.3.5 Ciri Habitat Lain 162

5.4 Mekanisme Kemandirian 165

6 Persekitaran Biotik 187
Jenny S. Cory dan Pauline S. Deschodt

6.2 Interaksi Tritropik 188

6.2.1 Kerumitan Selanjutnya 190

6.3 Interaksi Musuh Semulajadi Patogen&ndash 191

6.3.1 Entomopatogen&ndashEntomopatogen Interaksi 191

6.3.2 Interaksi Entomopatogen&ndashParasitoid 195

6.3.2.1 Kesan Patogen Terhadap Parasitoid 195

6.3.2.2 Kesan Parasitoid Terhadap Patogen 197

6.3.2.3 Kesan Tahap Penduduk 198

6.3.3 Interaksi Patogen&ndashPredator 199

6.4 Pertahanan Pengantaraan Mikrob 200

6.4.1 Simbion Warisan 201

6.4.2 Adakah Mikroflora Usus Mempengaruhi Kecenderungan Patogen? 202

6.4.3 Hala Tuju Masa Depan 204

Bahagian III Ekologi Kumpulan Patogen 213

7 Virus 215
Trevor Williams

7.2 Kepelbagaian Virus Patogen Invertebrata 216

7.3 Taburan Virus Patogen Invertebrata 219

7.4 Aspek Utama Ekologi Patogen 220

7.5.1 Penghantaran Mendatar 221

7.5.1.1 Menganggar Penghantaran Mendatar 223

7.5.2 Penghantaran Menegak 223

7.6.1 Kegigihan dalam Hos 225

7.6.2 Kegigihan Di Luar Hos 226

7.6.2.1 Kegigihan pada Tumbuhan 227

7.6.2.2 Kegigihan dalam Tanah 229

7.6.2.3 Kegigihan dalam Air 230

7.7.1 Hos ]Penyebaran Berantara 231

7.7.2 Faktor Persekitaran yang Terlibat dalam Penyerakan 232

7.7.3 Faktor Biotik yang Membantu Penyebaran Virus 233

7.7.4 Amalan Pertanian yang Mempengaruhi Penyebaran 234

7.7.5 Corak Spatial Penyerakan 235

7.8 Kepelbagaian Genetik dalam Virus 235

7.8.1 Kepelbagaian Genetik Berleluasa dalam Populasi Virus 235

7.8.2 Kepelbagaian Genetik Mengutamakan Kemandirian Virus 237

7.8.3 Apakah yang Menjana Kepelbagaian Genetik Terlalu Banyak? 238

7.8.4 Bagaimanakah Kepelbagaian Genetik Ditransmisikan? 239

7.9 Peranan Tingkah Laku Perumah dalam Ekologi Virus 240

7.9.1 Keputusan Mencari Makanan: Apa dan Tempat Makan 240

7.9.2 Risiko Kanibalisme 241

7.9.3 Penyakit Virus Berjangkit Seksual 241

7.9.4 Akibat Ekologi Manipulasi Perumah oleh Virus 242

7.9.4.1 Asas Molekul untuk Manipulasi Perumah 243

7.10 Dinamik Virus dalam Populasi Hos 244

7.10.1 Virus Patogen Boleh Mengawal Penduduk 244

7.10.2 Ciri-ciri Ekosistem yang Mengutamakan Penghantaran Virus 246

7.10.3 Perubahan Iklim dan Dinamik Populasi Serangga&ndashVirus 247

7.11 Pengaruh Faktor Abiotik terhadap Virus 248

7.11.1 Kesan Cahaya Ultraviolet pada Virus 248

7.11.2 Kesan Bermusim terhadap Virus 250

7.11.3 Kesan Suhu pada Virus 250

7.11.4 Kelembapan, Kelembapan dan Kerpasan 251

7.11.5 Kesan pH terhadap Virus 251

7.12 Faktor Biotik yang Berinteraksi dengan Populasi Virus 253

7.12.1 Fenologi Tumbuhan, Struktur, dan Nilai Pemakanan 253

7.12.2 Interaksi Fitokimia&Virus 253

7.12.3 Interaksi Virus dengan Hos Alternatif 254

7.12.4 Persaingan dan Kemudahan dalam Interaksi Virus dengan Organisma Lain 255

7.12.4.1 Interaksi Virus dengan Parasitoid 255

7.12.4.2 Interaksi Virus dengan Patogen Lain 257

7.12.4.3 Interaksi Virus dengan Mikrobiota 258

8 Bakteria 287
Trevor A. Jackson, Colin Berry dan Maureen O&rsquoCallaghan

8.2 Patogen Bakteria dan Persatuan dengan Serangga 288

8.3 Kepatogenan dan Keganasan 294

8.4 Penghantaran Penyakit 300

8.5 Kemandirian dalam Persekitaran 301

8.5.2 Persekitaran Berair 304

8.5.3 Pada Phylloplane dan Dalam Planta 304

8.6 Dinamik Populasi: Epizootik dan Enzootik 305

8.8 Bimbingan Ekologi Penggunaan Entomopatogen Bakteria dalam Kawalan Mikrob 309

9 Kulat 327
Ann E. Hajek dan Nicolai V. Meyling

9.1.1 Sistematik dan Taksonomi Kulat 328

9.1.2 Perkaitan Sistematik dan Taksonomi Kulat dalam Ekologi 330

9.2 Biologi dan Patologi Kulat 331

9.2.1 Biologi dan Patologi Kumpulan Utama Patogen Kulat 331

9.2.1.1 Entomophthoromycotina, Entomophthorales 331

9.2.1.2 Ascomycota, Hypocreales 333

9.2.2 Corak Taburan dan Persatuan Habitat Kulat Patogen Invertebrata 334

9.2.2.1 Corak Kelimpahan dan Taburan Kulat: Pandangan daripada Penggunaan Penanda Molekul 335

9.2.3 Faktor-faktor yang Mentadbir Corak Kepelbagaian Patogen Kulat 337

9.3 Dinamik Patogen Kulat 338

9.3.1 Penghantaran Penyakit 338

9.3.3 Kemandirian dan Kegigihan Persekitaran Kulat 341

9.3.4 Kesan Terhadap Kepadatan Populasi Tuan Rumah Terhadap Ruang dan Masa 342

9.4 Interaksi antara Patogen Kulat dan Individu Hos 344

9.4.1 Maklum Balas Perumah kepada Patogen Kulat untuk Mencegah atau Menyembuhkan Jangkitan 344

9.5 Kesan Faktor Abiotik terhadap Perumah yang Dijangkiti dan Inokula Patogen 347

9.6 Kesan Faktor Biotik terhadap Kulat Patogen 349

9.6.1 Persatuan Endofit dan Rhizosfera Patogen Kulat Invertebrata 349

9.6.1.1 Kejadian Semulajadi dan Taburan Kulat Patogen Invertebrata Sebagai Rakan Tumbuhan 350

9.6.1.2 Inokulasi Eksperimen Tumbuhan dengan Kulat Entomopatogen 351

9.6.1.3 Interaksi Kulat Langsung dan Tidak Langsung dengan Serangga dan Tumbuhan 352

9.6.2 Interaksi antara Symbionts Hos dan Patogen Kulat 353

9.6.3 Interaksi antara Patogen Kulat dan Musuh Semulajadi Lain 354

9.6.3.1 Interaksi antara Patogen yang menjangkiti bersama 355

9.6.3.2 Interaksi Patogen Kulat dengan Parasitoid dan Pemangsa 356

9.6.4 Mikoparasitisme Patogen Kulat 357

9.7 Penggunaan Kulat Patogen untuk Kawalan Biologi Invertebrata 358

10 Mikrosporidia 379
Gernot Hoch dan Leellen F. Solter

10.1.1 Mekanisme Jangkitan 380

10.1.2 Kitaran Hidup Mikrosporidian 381

10.2.1 Kerentanan kepada Mikrosporidiosis 383

10.2.3 Tindak Balas Tingkah Laku 384

10.3 Populasi Patogen 385

10.3.1 Keganasan Patogen Mikrosporidian 385

10.3.2 Kekhususan Hos 386

10.3.2.1 Kekhususan Hos Fisiologi lwn Ekologi 386

10.3.2.3 Hos Ganti 387

10.3.2.4 Mikrosporidia Melintasi Halangan Invertebrata&ndashVertebrata 387

10.3.3 Kegigihan dalam Persekitaran 388

10.4.1 Penghantaran Mendatar 390

10.4.1.1 Penghantaran daripada Hos Hidup 390

10.4.1.2 Penghantaran selepas Kematian Hos 392

10.4.1.3 Penghantaran oleh Vektor Parasitoid 393

10.4.1.4 Kesan Pembangunan Hos dan Interaksi Hos&ndashMicrosporidia terhadap Penghantaran 393

10.4.2 Penghantaran Menegak 394

10.5.1 Kelaziman Mikrosporidian dalam Populasi Invertebrata dan Kesan terhadap Populasi Hos 397

10.5.2 Mikrosporidia dalam Serangga Terkultur 398

10.5.3 Mikrosporidia sebagai Agen Kawalan Biologi Berpotensi 399

11 Nematod 415
David I. Shapiro-Ilan, Ivan Hiltpold dan Edwin E. Lewis

11.1.1 Kepelbagaian dan Sejarah Kehidupan 415

11.1.2 Pengagihan EPN 420

11.4 Populasi Patogen 422

11.4.1 Patogenisiti dan Keganasan 422

11.4.2 Kegigihan dan Kitar Semula 423

11.4.3 Kelakuan Bersurai dan Mencari Makanan 423

11.5 Faktor Persekitaran Abiotik 424

11.5.2 Suhu Tanah 425

11.5.3 Ciri Tanah dan Kimia 425

11.5.4 Cahaya Ultraviolet 426

11.6 Interaksi Biotik 426

11.6.1 Interaksi dengan Pemangsa dan Patogen, Termasuk Pertandingan Intraguild 426

11.6.2 Petunjuk Digunakan dalam Hos ]Pencarian dan Navigasi 427

11.6.3 Interaksi Tri ]trofik (Tumbuhan, Serangga, Nematod) 427

11.7 Ekologi Gunaan dan Aspek dalam Kawalan Mikrob 427

11.7.1 Pengeluaran, Rumusan dan Aplikasi 427

11.7.2 Pendekatan Kawalan Mikrob 428

Bahagian IV Ekologi Gunaan Patogen Invertebrata 441

12 Memodelkan Epizootik Serangga dan Akibat Peringkat Populasinya 443
Bret D. Elderd

12.2 Patogen dan Perumahnya 445

12.3 Memodelkan Penghantaran Penyakit: Epizootik Tunggal 447

12.3.1 Model Fenomenologi dan Mekanistik 448

12.4 Memasang Model pada Data 450

12.4.1 Kriteria Maklumat Akaike 451

12.4.2 Contoh AIC dalam Tindakan 452

12.5 Pendekatan Bayesian 453

12.5.1 Memasang Model Bayesian 454

12.5.2 Contoh WAIC dalam Tindakan 456

12.6 Dinamik Jangka Panjang 457

12.6.1 Dinamik Jangka Panjang: Menghadapi Model dengan Data 458

12.6.2 Masa ]Siri Diagnostik 459

12.7 Mengubah suai dan Menggunakan Model 462

13 Memanfaatkan Ekologi Patogen Invertebrata dalam Kawalan Mikrob 469
Surendra K. Dara, Tarryn A. Goble dan David I. Shapiro-Ilan

13.1 Asas Kawalan dan Pendekatan Mikrob 469

13.1.1 Kawalan Mikrob Klasik 469

13.1.2 Pelepasan Inokulasi 471

13.1.3 Siaran Inundatif 472

13.1.4 Pemuliharaan/Manipulasi Alam Sekitar 472

13.2 Pertimbangan Ekologi 472

13.2.1 Kekhususan Hos 472

13.2.2 Keupayaan Bersurai 473

13.2.4 Ketumpatan Patogen 473

13.2.5 Hos ]Faktor Berkaitan 474

13.2.7 Kegigihan Alam Sekitar 475

13.3 Kaedah untuk Meningkatkan Kawalan Mikrob 476

13.3.1 Memperbaiki Organisma sebagai Agen Kawalan Mikrob 476

13.3.2 Memperbaiki Kaedah Pengeluaran 477

13.3.3 Meningkatkan Teknologi Formulasi dan Aplikasi 478

13.3.4 Memperbaiki Alam Sekitar 479

13.4 Menggabungkan Kawalan Mikrob ke dalam Sistem Pengurusan Perosak Bersepadu 480

13.4.1 Isu Kawal Selia 480

13.4.2 Pendekatan Bersendirian lwn. Bersepadu 481

14 Pencegahan dan Pengurusan Penyakit dalam Invertebrata Daratan 495
Jørgen Eilenberg dan Annette Bruun Jensen

14.1.1 Jenis Kemudahan Pengeluaran 496

14.1.2 Penghantaran Penyakit Serangga dalam Kemudahan Pengeluaran 499

14.2 Kegunaan utama Serangga dan Hama dalam Pengeluaran dan Penghantaran Patogen Serangga dalam Sistem Pengeluaran 500

14.2.1 Pendebungaan dan Pengeluaran Madu 500

14.2.3 Kawalan Biologi 509

14.2.4 Pengeluaran Serangga untuk Makanan dan Makanan 512

14.3 Status Perkhidmatan Diagnostik 516

14.4 Memastikan Pengeluaran Serangga Sihat 516

15 Pencegahan dan Pengurusan Penyakit Berjangkit dalam Invertebrata Akuatik 527
Jeffrey D. Shields

15.1.1 Pelbagai Patogen Menjangkiti Invertebrata Akuatik 527

15.1.2 Gambaran Keseluruhan Isu Penyakit dalam Menilai Epidemik dalam Invertebrata Akuatik 531

15.3 Penyakit Krustasea 543

15.3.1 Wabak dalam Akuakultur Udang 544

15.3.2 Pengurusan Penyakit dalam Akuakultur Udang 548

15.3.2.1 Menukar Spesies dan Patogen Khusus ]Stok Bebas (SPF) 549

15.3.2.3 Pembangunan &ldquoVaksin&rdquo 551

15.3.2.4 Kawalan Ekologi dan Biologi 551

15.3.3 Udang dan Krebspest 552

15.3.4 Kemunculan Penyakit dalam Budaya Ketam Sarung Cina 553

15.4 Perikanan Krustasea 554

15.4.1 Ketam Salji dan Penyakit Ketam Pahit 555

15.4.2 Penyakit Cangkang Udang Udang dan Epizootik Amerika 556

15.4.3 Lobster Berduri dan PaV1 559

15.5 Agensi untuk Pengurusan Penyakit 560

16 Ekologi Penyakit Berjangkit Invertebrata Baru Muncul 587
Colleen A. Burge, Amanda Shore-Maggio dan Natalie D. Rivlin

16.2 Hos&ndashHubungan Patogen dan Perubahan Antropogenik 593

16.2.1 Konteks Ekologi Perumah Invertebrata&ndashHubungan Patogen 593

16.2.2 Perubahan Antropogenik dan Kemunculan Penyakit 594

16.2.2.2 Faktor Patogen 595

16.2.2.3 Faktor Persekitaran 595

16.3 Kajian Kes Kemunculan Penyakit Invertebrata 596

16.3.1 Jangkitan Herpesvirus Molluscan pada Bivalvia 597

16.3.1.1 OsHV ]1 Jangkitan Tiram Pasifik dan Bivalvia Lain 598

16.3.2 Penyakit Nekrosis Hepatopankreatik Akut Udang 601

16.3.3 Densovirus Muncul Arthropod dan Echinoderms 603

16.3.3.1 Acheta domesticus Densovirus 603

16.3.3.2 Sea Star ]Asosiasi Densovirus 604

16.3.4 Patogen Pendebunga Muncul 605

16.3.4.1 Pemusnah Varroa dan Virus Sayap Cacat 606

16.3.4.2 Tumpahan dan penyebaran Nosema ceranae 607

16.3.4.3 Pelbagai tekanan, Kematian Lebah dan Langkah Kawalan 608

16.3.5 Penyakit Karang Muncul 608

16.3.5.1 Penyakit Jalur Hitam 609

16.3.5.2 Serratosis Acroporid 610

16.3.5.3 Masalah Menghadapi Penyiasatan Penyakit Karang 610

17 Kesimpulan dan Hala Tuju Masa Depan 627
David Shapiro-Ilan dan Ann E. Hajek

17.1 Meningkatnya Kesegeraan Kajian Ekologi Patogen Invertebrata 627

17.1.1 Keselamatan Makanan dan Peranan Kawalan Mikrob 627

17.1.2 Pemuliharaan Organisma Berfaedah 628

17.2 Masa Depan untuk Patogen Invasif dan Invertebrata Asli 629

17.3 Arah Baru dan Alat Novel untuk Mengkaji Ekologi Invertebrata 630


Okra: Asal, Warisan dan Varieti | India

Selepas membaca artikel ini anda akan belajar tentang: 1. Asal Usul Bendi 2. Taksonomi Bendi 3. Botani 4. Taburan 5. Objektif Pembiakan 6. Pewarisan 7. Sumber Rintangan 8. Selfing dan Persilangan 9. Pembiakan Ketahanan Penyakit 10. Benih Pengeluaran 11. Kaedah Pembiakan 12. Varieti.

Asal Usul Bendi:

Menurut Zeven dan Zhukovsky (1975), bendi dipercayai berasal dari Pusat Asal Hindustan, terutamanya India, Pakistan dan Burma. Walau bagaimanapun, menurut beberapa pengarang lain, A. esculentus berasal dari India, Ethiopia, Afrika Barat dan Asia Tropika.

Taksonomi Okra:

Genus Abelmoschus adalah kecil dan terdiri daripada sekurang-kurangnya enam spesies. Ini berasal dari Pusat Hindustan atau Asia Tenggara, dan berkait rapat antara satu sama lain. Pengarang lain telah mengiktiraf entiti khusus lain atau amphidiploid yang subur.

Senarai spesies, ciri tersendiri, dan nombor kromosom apabila diketahui, diberikan dalam Jadual 14.1:

* Spesies mengikut J.van Borssum Waalkes

Okra Afrika Barat dicirikan oleh banyak perbezaan morfologi dan fisiologi daripada bendi biasa. Bendi Afrika Barat mempunyai segmen epicalyx yang kurang, urat daun yang sangat merah, berbunga lewat apabila ditanam pada musim panas, buah yang dipasang pada sudut tepat ke batang, dan sejumlah besar biji setiap buah. Selain itu, buah dari jenis Afrika Timur cenderung pendek, dengan hujung steril yang agak panjang (Rajah 14.1).

Hibridisasi Afrika Barat dengan Okra Biasa:

Persilangan antara bendi biasa dan bendi Afrika Barat dibuat dengan mudah dalam kedua-dua arah. Biasanya, setiap bunga yang didebungakan menghasilkan buah dan set benih adalah perkara biasa. Benih itu sama sekali tidak abnormal dan bercambah dalam masa yang sama dengan benih induk betina.

F1 kacukan adalah lebih serupa dalam penampilan dengan induk Afrika Barat daripada bendi biasa (Jadual 14.2). Mereka teguh, cenderung mempunyai banyak anthocyanin, biasanya mempunyai ruas yang memendekkan dan mekar dengan lebih mudah semasa hari-hari musim panas yang panjang. Mereka mudah dibezakan daripada ibu bapa Afrika dengan pertumbuhan yang lebih pesat, buah tegak, dan segmen sub-kaliks yang lebih sempit dan lebih banyak. Mereka berbunga lebih mudah semasa hari yang panjang.

F1 kacukan agak steril (Jadual 14.3). Saiz debunga dalam julat butir daripada yang sangat kecil, lutsinar, dan jelas tidak boleh hidup, melalui saiz sederhana, kepada butir debunga yang jauh lebih besar daripada mana-mana induk (0.24 mm).

Kesuburan debunga yang lemah ini dicerminkan dalam pengeluaran banyak buah dengan sedikit biji, sama ada melalui pendebungaan silang buatan atau semula jadi. Benih yang dihasilkan selalunya mengecut, kecil, atau kosong. Sangat sedikit F2 benih bercambah dalam kebanyakan kacukan. Sebaliknya, salib belakang menggunakan debunga daripada salah satu induk adalah kurang steril daripada pendebungaan sendiri dan benih yang subur mudah dihasilkan.

Botani Okra:

Okra ialah tumbuhan herba tahunan tegak, 3-6 kaki tinggi dan mempunyai bunga seperti bunga raya. Ia mempunyai sistem akar tunggang yang dalam. Batang separa berkayu, biasanya hijau dan kadang-kadang, berpigmen dengan warna hijau atau kemerahan. Ia tegak, mempunyai 3-5 cabang. Daunnya berselang-seli, 3-7 lobed palmate, hirsute dan bergerigi. Daun disubtend oleh sepasang stipula sempit. Warna daun bendi adalah hijau tua dan daun menyerupai daun maple.

Bunga adalah bersendirian, axillary mempunyai epicalyx (sehingga 10). Peduncle bunga adalah 2-2.5 cm panjang. Bunganya besar, sekitar 2 inci diameter, dengan 5 kelopak putih hingga kuning dengan bintik merah atau ungu di pangkal setiap kelopak. Bunga hanya bertahan selama sehari. Setiap bunga membentuk polong hijau kecil. Bunganya adalah hermaphrodite dan actinomorphic. Terdapat 5 sepal injap, berbeza atau sepal asasnya.

Androecium terdiri daripada banyak stamen monoadelphous dengan filamen mencapah apikal. Gynoecium ialah putik majmuk tunggal 2 hingga banyak karpel dengan bilangan gaya atau cabang gaya yang sama. Ovari lebih unggul dengan 2 hingga banyak lokul yang masing-masing mempunyai beberapa ovul. Calyx dicantum sepenuhnya untuk membuat bekas pelindung untuk putik bunga dan berpecah menjadi lobus apabila putik itu terbuka.

Calyx, corolla dan stamens bercantum di pangkal dan gugur sebagai satu bahagian selepas anthesis. Bahagian seksual yang tegak terdiri daripada 5 hingga 9 bahagian gaya, setiap bahagian dengan capitate stigma, dikelilingi oleh tiub staminal yang mengandungi banyak filamen. Buahnya memanjang, kapsul berbentuk kon, terdiri daripada 5 rongga yang mengandungi ovul. Buah bendi mengandungi 20-50 biji, bujur, licin, hijau tua hingga coklat gelap.

Pengagihan Okra:

Okra, lady’s finger (Abelmoschus esculentus L. Moench, 2n = 2x = 130) ialah herba tahunan yang cepat tumbuh dengan biji benih muda yang digunakan sebagai sayuran biasa. Ia adalah tanaman sayur-sayuran buah-buahan yang penting di kawasan tropika dan subtropika di dunia. Ia biasanya ditanam melalui bahagian yang lebih panas di Asia sederhana, Eropah selatan, Afrika utara, Amerika Syarikat, dan di semua bahagian tropika.

Ia disesuaikan dengan iklim dengan musim hujan yang agak singkat, justeru penerimaan khasnya di timur laut Brazil di mana ia dianggap sebagai tanaman yang tidak pernah gagal. Di India, bendi ditanam secara komersial di negeri Gujarat, Maharashtra, Andhra Pradesh, Uttar Pradesh, Madhya Pradesh, West Bengal, Assam, Rajasthan, Tamil Nadu, Karnataka, Haryana dan Punjab meliputi kawasan seluas kira-kira 4.5 lakh ha pada tahun 2009 -10 dengan produktiviti 10.5 tan/ha.

India menduduki tempat pertama di dunia dalam pengeluaran bendi. Negara lain yang menanam bendi secara komersial ialah Turki, Iran, Afrika Barat, Yugoslavia, Bangladesh, Afghanistan, Pakistan, Myanmar, Jepun, Malaysia, Brazil, Ghana, Ethiopia, Cyprus dan Amerika Syarikat Selatan.

Objektif Pembiakan Bendi:

2. Hijau tua, lembut, nipis, sederhana panjang, licin, 4-5 biji bergerigi pada peringkat boleh dipasarkan

3. Polong bebas daripada rambut yang mencolok, biji membonjol dan cincin kuning di pangkal

4. Penuaian awal dan berpanjangan

5. Tumbuhan pendek dengan lebih banyak bilangan nod, internod pendek

6. Keupayaan penetapan benih yang optimum

7. Pod sesuai untuk industri pemprosesan dan pasaran eksport

8. Ketahanan terhadap penyakit (virus mozek urat kuning, layu fusarium, bintik daun cercospora)

9. Rintangan/toleransi terhadap serangga (pengorek buah dan pucuk, jassid dan lalat putih)

10. Toleransi kepada tegasan abiotik (suhu rendah, hujan berlebihan, tanah masin dan beralkali)

Warisan Bendi:

Martin (1981) menjalankan kajian variasi 29 ciri (Jadual 14.5) daripada 585 varieti atau anak benih bendi. 17 varieti Afrika Barat boleh dibezakan daripada yang lain berdasarkan 5 ciri yang membezakan (Jadual 14.6). Di samping itu, anak benih generasi outcrossing ke-3 populasi berbeza daripada koleksi varieti dalam beberapa ciri, yang paling penting ialah lebih banyak benih/pod dan lebih banyak buah/tumbuhan.

Ini dipercayai hasil daripada pemilihan besar-besaran. Kumpulan negara berbeza secara ketara dalam ciri, tetapi perbezaan ini mungkin disebabkan saiz sampel yang kecil. Tiada ciri yang membezakan seperti itu dilihat di kalangan kumpulan negara yang diwakili oleh sejumlah besar varieti. Walau bagaimanapun, satu kumpulan negara adalah pengecualian.

Sekumpulan 17 jenis dari Afrika sangat boleh dibezakan daripada semua kumpulan negara lain berdasarkan watak berikut:

(iii) Mengurangkan bilangan bract sub-calyx

(iv) Polong dipasang pada sudut tepat pada batang

(v) Bilangan benih/pod yang banyak

Pewarisan ciri utama bendi seperti yang diringkaskan oleh Martin et al. (1981) diberikan dalam Jadual 14.5:

Genetik rintangan kepada mozek urat kuning, penyakit serius bendi telah disiasat oleh saintis India, iaitu. Harbhajan Singh, N.D. Jambhale, Y.S. Nerkar, M.R. Thakur dan B.R. Sharma, dll. Singh et al. (1962) melaporkan penglibatan dua gen resesif (yv1/yv1, yv2/yv2) dalam talian tahan medan IC 1542.

Walau bagaimanapun, Thakur (1976) semasa mengkaji cara pewarisan kepada mozek urat kuning bendi dalam salib interspesifik, A. esculentus x A. manihot ssp. manihot di bawah keadaan epifitotik semula jadi, melaporkan rintangan dikondisikan oleh dua gen dominan yang saling melengkapi walaupun terdapat kemandulan hibrid. Loji pembawa tanpa gejala juga dikesan.

Sebaliknya Jambhale dan Nerkar (1981) melintasi dua spesies Abelmoschus, iaitu A. manihot (L.) Medik dan A. manihot (L.) Medik sp manihot, tahan terhadap YVM, kepada A. esculentus cv Pusa Sawani, varieti yang mudah terdedah. Kacukan itu tahan dan sebahagiannya subur. Corak pengasingan untuk tindak balas penyakit dalam F2, BC1 dan generasi berikutnya daripada dua salib mendedahkan bahawa rintangan terhadap YVM dikawal oleh satu gen dominan dalam setiap spesies.

Sumber Penentangan Bendi:

Berdasarkan Sharma dan Arora (1993), maklumat tersebut diringkaskan seperti berikut:

Selfing dan Crossing of Okra:

(i) Tutup putik bunga yang belum dibuka dengan beg kertas pendebungaan gandum separuh panjang dan stap atau klipkan beg itu dengan selamat di sepanjang peduncle. Letakkan cincin benang pada peduncle. Pod akan keluar menembusi beg. Cincin-benang bertindak sebagai tanda pengenalan untuk buah sendiri semasa penuaian.

(ii) Ikat benang bulat di sekeliling pedicel/peduncle dan simpulkan di sekeliling kelopak bunga yang belum dibuka dengan sehelai benang yang sama. Kelopak bunga akan membonjol keluar di bawah benang yang diikat semasa pembukaan bunga dan stigma di dalamnya kekal dilindungi daripada butiran debunga yang tidak diingini. Benang yang diikat pada pedicel adalah tanda pengenalan untuk pod selfed semasa penuaian.

Pembungaan dalam bendi bermula dari bawah ke atas. Dehiscence biasanya berlaku sekitar 8-10 pagi, kira-kira 20 minit selepas bunga anthesis kekal terbuka selama tiga perempat hari dan layu pada sebelah petang. Stigma boleh diterima semasa antesis, oleh itu pendebungaan tidak begitu berjaya pada peringkat tunas.

Emaskulasi dilakukan pada lewat petang. Putik yang gemuk, bersaiz besar, belum dibuka dipilih. Dua belahan panjang dan bertentangan dibuat pada kelopak dengan forsep. Kedua-dua bahagian sepal ditarik ke bawah dan dikeluarkan. Kini, seluruh corolla dan anthers dikeluarkan dan putik emas telah ditutup dengan beg kertas yang diikat dengan klip U pada pedisel.

Bunga hanya untuk dibuka sepenuhnya dikumpulkan. Calyx dan corolla dibuang dan anter dehicing disapu pada stigma tunas yang dikebiri pada petang sebelumnya. Satu bunga jantan boleh digunakan untuk mendebungakan 3-4 bunga betina. Selepas pendebungaan, tunas sekali lagi ditutup dengan beg kertas pendebungaan dan label yang mempunyai nama induk jantan berserta tarikh pendebungaan diikat pada pedisel putik bunga yang didebungakan.

Pembiakan Bendi Ketahanan Penyakit:

Mozek Urat Kuning (Virus Gemini):

1. Penyakit bendi yang paling dahsyat.

2. Pertama kali dilaporkan oleh C.S. Kulkarni pada tahun 1924 diikuti oleh B.N. Uppal, P.M. Verma dan S.P. Capoor pada tahun 1940 dan S.P. Capoor dan P.M. Verma pada tahun 1950.

3. Simptom ciri termasuk-rangkaian tenunan homogen urat kuning yang menyelubungi pulau-pulau tisu hijau.

4. Pada mulanya, daun yang dijangkiti hanya menunjukkan urat berwarna kuning tetapi pada peringkat kemudian, seluruh daun menjadi kuning sepenuhnya.

5. Tumbuhan yang dijangkiti pada peringkat awal kekal terbantut dan buah daripada tumbuhan yang dijangkiti menunjukkan warna kuning pucat.

6. Buah selalunya kecil, cacat dan keras.

7. Jangkitan adalah melalui whitefly (Bemisia tabaci).

8. 10 lalat putih/tumbuhan diperlukan untuk menyebabkan jangkitan.

9. Tempoh pemerolehan adalah 1 jam dan lalat putih viruliferous boleh menghantar virus kepada tumbuhan yang sihat selepas 30 minit memberi makan.

10. Puasa awal sehingga 4 jam. meningkatkan kecekapan lalat putih sebagai vektor.

11. Tumbuhan yang dijangkiti dalam tempoh 20 hari selepas percambahan kekal terbantut dan hampir tidak mengeluarkan sebarang buah.

12. Populasi whitefly dan kejadian YVMV adalah maksimum semasa Mac-Jun di bawah keadaan Bangalore dan Pune. Di utara India, keterukan adalah tinggi dalam penanaman musim hujan, terutamanya pada bulan Jun menyemai. Di Pune, bendi yang disemai Mei menunjukkan ekspresi penyakit yang baik pada bulan Julai.

13. Virus ini tergolong dalam begomavirus keluarga Geminiviridae.

14. Arka Anamika, Arka Abhay dan Parbhani Kranti pada mulanya sangat bertolak ansur.

15.Aksesi manihot Abelmoschus telah menunjukkan penentangan terhadap YVMV.

16. Salib bendi yang ditanam dengan Abelmoschus manihot di bawah SM2/SM3 diikuti dengan kaedah pembiakan baka dijangka memberikan pemisah tahan YVMV.

Enation Leaf Curl of Okra:

1. Pertama kali diperhatikan di Institut Penyelidikan Hortikultur India, Hessarghatta, Bangalore pada tahun 1924 oleh S.J. Singh dan 1986 oleh S.J. Singh dan O.P. Dutta.

2. Simptom awal termasuk pembentukan kecil berkepala pin pada daun, diikuti dengan tekstur daun yang berkutil dan kasar. Kemudian, daun mula menggulung ke arah tambahan. Bangsa yang berani menonjol pada permukaan bawah daun.

3. Terdapat berpintal pada batang utama, dahan sisi dan tangkai daun. Daun menjadi tebal dan berkulit. Dalam kes yang teruk, lenturan batang adalah jelas.

4. Penghantaran virus adalah melalui cantuman. Penghantaran semula jadi adalah melalui whitefly.

5. Tiada sumber tahan dilaporkan.

Bintik Daun Cerscospora (Cercospora abelmoschi, C. malayensis, C. hibisci):

1. Penyakit ini berlaku pada musim lembap.

2. Tompok tidak sekata coklat/bintik sudut hitam berjelaga.

3. Daun yang terjejas bergulung, layu dan gugur.

4. Mungkin berlaku defoliasi yang teruk.

Pengeluaran Benih Bendi:

Benih Penternak/Asas – 400 m

Penerangan Kultivar:

Ini selaras dengan George (1999).

1. Penggunaan: produk segar, pengeluaran awal, pemprosesan, pengeringan, pasaran eksport, kesesuaian untuk tempoh hari tertentu

2. Benih: warna benih matang

3. Masa permulaan anthesis

4. Tabiat tumbuhan: tahap perkembangan cawangan dan pucuk sisi

Tahap pigmentasi antosianin

Ciri daun dari daun pertama hingga daun kelima, termasuk lobus

Ciri daun dari daun keenam dan seterusnya, termasuk lobing

Antosianin ada atau tiada di pangkal kelopak

Jika ada, pada permukaan dalam dan/atau luar

Bentuk dalam bahagian melintang dan bilangan faset

Tahap spininess (akil baligh)

9. Rintangan kepada patogen tertentu cth. virus mozek

Semak ketinggian umum tumbuhan dan morfologi tabiat daun pigmentasi daun, tangkai daun dan batang mengeluarkan tumbuhan dengan gejala virus.

Semak saiz relatif, pigmentasi dan keamatan warna bunga mengeluarkan tumbuhan dengan gejala virus.

Semak sama ada buah-buahan adalah benar untuk menaip membuang tumbuhan dengan gejala virus.

Penuaian dan Pengekstrakan Benih:

Terdapat pematangan buah bendi secara berurutan pada tumbuhan. Polong jenis berbuah sudut mempunyai kecenderungan untuk membelah apabila benih masak. Penuaian tangan tradisional buah masak masih dilakukan di banyak kawasan tropika di mana terdapat tenaga kerja yang mencukupi, walaupun tanaman itu digabungkan apabila dihasilkan secara besar-besaran di Amerika Syarikat.

Biji benih diekstrak selepas buah yang dituai tangan menjadi kering dan rapuh. Kaedah pengekstrakan biji benih yang paling berkesan dengan tangan ialah memulas buahnya terbuka. Sebagai alternatif, buahnya sama ada dikipas atau biji diekstrak dengan mesin pengirik pegun.

Pengeluaran Benih Hibrid pada Skala Komersial di India:

Benih hibrid bendi pada skala komersial kebanyakannya dihasilkan di kawasan Ranebennur di Karnataka dan daerah Buldha di Maharashtra. Sistem ini adalah manual sepenuhnya, di mana pengebiran berskala besar diikuti dengan pendebungaan diamalkan oleh ahli keluarga penanam kontrak yang terlatih. Musim pengeluaran ialah musim hujan.

Saiz plot pengeluaran ialah 1000 m 2 /unit plot. Setiap plot pengeluaran memerlukan 200 g benih induk betina dan 50 g benih induk jantan. Benih ini menimbulkan kira-kira 2000-2500 tumbuhan betina dan 500 tumbuhan jantan. Satu g benih = 10 biji = 10 pokok secara purata. Untuk pengebiran, kelopak, corolla dan semua anter dikeluarkan dari tunas yang belum dibuka, tetapi matang bersaiz penuh pada sebelah petang oleh buruh terlatih.

Semasa proses ini, semua bunga terbuka dan buah yang telah ditetapkan juga dikeluarkan. Keesokan harinya, tunas bunga yang berkembang sepenuhnya, tidak terbuka dikumpulkan dari induk jantan dan dibiarkan seperti itu di bawah sinar matahari untuk beberapa waktu. Calyx dan corolla bunga-bunga itu dibuang dan lajur staminal yang menyahhiscing digunakan untuk menyapu stigma bunga induk betina yang sudah kebiru-biruan. Satu bunga jantan boleh digunakan untuk mendebungakan 3-4 bunga betina.

Dalam sesetengah kes, tunas bunga induk jantan yang matang tetapi belum dibuka dikumpulkan pada waktu petang, kelopak dikeluarkan dan tunasnya dibawa pulang dan disimpan di bawah mentol. Dalam proses ini, mereka dibuka pada waktu malam dan anter mula dehiscing. Ini digunakan untuk pendebungaan keesokan harinya. Dalam keadaan biasa kira-kira 50 kg benih hibrid/unit plot 1000 m 2 dihasilkan.

Kaedah Pembiakan Terpakai untuk Okra:

Ini terpakai kepada landraces/cultivar yang dikumpul dari ladang Farmers’, contohnya, Pusa Makhmali dibiakkan daripada bahan yang dikumpul dari West Bengal. Begitu juga, Co 1 ialah pilihan tumbuhan tunggal daripada Red Wonder.

2. Kaedah Pedigree:

Kaedah ini terpakai kepada generasi pengasingan selepas penghibridan antara penderma menjanjikan yang diingini. Pemilihan tumbuhan individu bermula di F2 generasi dan berterusan sehingga F5 atau F6. Sebagai contoh, Pusa Sawani dibangunkan melalui kaedah ini dalam persilangan antara varieti. Punjab Padmini, Parbhani Kranti, P7, Arka Anamika dan Arka Abhaya adalah contoh berikutan penghibridan interspesifik.

Tiada pencapaian ketara dalam bendi melalui kaedah pembiakan ini setakat ini. Phadvibulya et.al. (2009) telah melaporkan beberapa kejayaan dalam membangunkan pilihan tahan YVMV di Thailand berdasarkan mutasi teraruh.

Para saintis ini menyinari benih dua jenis bendi, Annie dan Okura dengan sinar gamma pada dos 400 dan 800 Gy. Saringan loji tahan YVMD telah dijalankan untuk M3 dan M4 tumbuhan di bawah keadaan ladang dan keadaan rumah hijau menggunakan penghantaran lalat putih.

Satu M4 tumbuhan Okura yang disinari pada 400 Gy dilaporkan sangat tahan, tetapi tiada satu pun daripada Annie. M5 tumbuhan M4 tumbuhan yang menunjukkan ketahanan terhadap YVMD telah disaring lebih lanjut untuk YVMD di bawah kedua-dua keadaan rumah hijau dan ladang. Sepuluh garisan tahan yang diperolehi dengan menapis rintangan YVMD sehingga generasi M7 telah dipilih untuk percubaan hasil.

Tiga daripada garisan mutan telah dinilai selanjutnya di lokasi di mana YVMD tersebar secara serius. Walau bagaimanapun, hanya sebahagian kecil tumbuhan garisan mutan yang kelihatan tahan sepanjang tempoh pertumbuhan keseluruhan, yang lain akhirnya, menunjukkan gejala urat kuning.

Oleh itu, keputusan bersih tidak boleh membawa kepada pengkomersilan mutan. Oleh itu, pembiakan mutasi untuk rintangan YVMD dalam okra harus dimulakan dengan kemungkinan besar menentangnya dan penternak harus realistik dalam pendekatan.

4. Pembiakan Heterosis:

Heterosis dalam bendi telah dilaporkan untuk pelbagai ciri ekonomi, iaitu. berbunga awal dan lewat, ketinggian tumbuhan, bilangan, berat dan saiz buah, bilangan rabung, boleh dipasarkan dan jumlah hasil.

Menggunakan pengebiran tangan dan pendebungaan, hibrid komersial dibangunkan. Terdapat hibrid yang menjanjikan di bawah syarikat benih sektor swasta di India. Pasaran benih bendi semasa di India adalah kira-kira 4000 tan untuk kultivar pendebungaan terbuka dan 1000 tan untuk kacukan.

Kacukan yang terkenal di pasaran India pada masa ini adalah seperti berikut:

Benih Krishdhan: Hib 215 dan 577

Kacukan ini mempunyai potensi hasil yang tinggi dan tahap toleransi yang tinggi terhadap virus mozek urat kuning.

Varieti Bendi:

Varieti penting bendi diterangkan seperti berikut.

Ia dibangunkan oleh H.B. Singh dan S.M. Sikka pada tahun 1955 di Bahagian Pengenalan Tumbuhan ketika itu, IARI, New Delhi, hasil pemilihan daripada bahan tempatan yang dikumpul dari Bengal Barat. Ia adalah varieti awal. Polong licin, lurus, bermata 5, menarik, hijau muda, langsing, panjang 15-20 cm. Potensi hasil ialah 100 q/ha.

Ia dibiakkan oleh H.B. Singh pada 1957-58 di Bahagian Pengenalan Tumbuhan, Bahagian Botani, IARI, New Delhi. Ia berasal daripada kacukan IC-1542 (rintangan medan terhadap virus mozek urat kuning) dan Pusa Makhmali. Tumbuhan adalah 120-180 cm tinggi pada musim hujan. Buahnya licin (berbulu sedikit di tepi), bermata 5, hijau tua dan panjang 18-20 cm.

Ia dibezakan dengan kehadiran tompokan ungu pada pangkal kelopak kuning pada kedua-dua belah (karakter induk IC 1542), manakala dalam kebanyakan jenis bendi, tampalan hanya terdapat pada bahagian dalam. Pada mulanya, ia dilaporkan bebas daripada YVM. Tetapi pada masa ini ia didapati mudah terdedah.

Varieti ini masih popular untuk tumbuh di dataran utara India dalam tempoh bebas virus (musim bunga musim panas). Ia telah dimaklumkan oleh jawatankuasa benih pusat pada tahun 1969 untuk penanaman am di seluruh negara. Potensi hasil ialah 100 q/ha.

Ia telah dibangunkan oleh Universiti Pertanian Tamil Nadu, Coimbatore pada tahun 1976. Ia adalah pilihan tumbuhan tunggal daripada populasi Red Wonder yang dikumpul dari Hyderabad. Tumbuhannya sederhana tinggi (90-120 cm) dengan 5-8 cabang. Batang, pucuk, tangkai daun, pelepah dan urat basal permukaan bawah lamina berwarna merah merah terang. Daun berlobus dalam (5-7 lobus).

Buah pertama ditanggung pada nod ke-5 dan setiap tumbuhan menghasilkan purata 20 buah dengan berat sekitar 300 g. Buahnya panjang, langsing, berbujur 5, berkilat, licin dan merah merah, tetapi warnanya hilang apabila dimasak. Ia mempunyai toleransi lapangan terhadap YVM tetapi terdedah kepada pengorek buah dan cendawan serbuk. Ia sesuai untuk musim hujan, musim sejuk dan musim panas di Tamil Nadu. Ia telah dimaklumkan oleh jawatankuasa benih pusat pada tahun 1978.

Ia telah dikembangkan oleh Universiti Pertanian Tamil Nadu, Coimbatore pada tahun 1978. Ia adalah mutan teraruh, diasingkan daripada ‘Pusa Sawani’. Secara purata, terdapat 13 nod/tumbuhan. Batang berwarna hijau dengan pigmentasi ungu muda. Berbuah bermula dari simpul ke-4-5. Ia mengambil masa 33 hari untuk berbunga pertama dan 43 hari untuk memetik pertama. Buah-buahan berwarna hijau muda, kira-kira 20 cm panjang. Ia telah dimaklumkan oleh jawatankuasa benih pusat pada tahun 1985.

Ia telah dikembangkan oleh B.R. Sharma pada tahun 1982 di Universiti Pertanian Punjab, Ludhiana daripada persilangan antara Abelmoschus esculentus dan A. manihot ssp. manihot.F1 tumbuhan salib A. esculentus cv. ‘Reshmi’ X A. manihot ssp. manihot cv. Ghana telah dihibridkan dengan F2 (OP) tumbuhan salib A. esculentus cv. Pusa Sawani X A. manihot ssp. manihot cv. Ghana.

Pemilihan berterusan untuk penentangan terhadap virus mozek vena kuning dan ciri hortikultur yang diingini dalam generasi berikutnya membawa kepada pengasingan Ludhiana Sel-1 dalam F8 generasi yang kemudiannya dinamakan sebagai ‘Punjab Padmini’. Tumbuhan adalah tinggi (180-200 cm). Batang, pucuk, tangkai daun dan urat basal permukaan bawah lamina berwarna merah sedikit merah. Daunnya besar, hijau tua, berbulu, dengan 3-5 lobus sederhana.

Ia berbunga dalam 45-50 hari dan petik pertama bermula kira-kira 55 hari selepas menyemai. Berbuah bermula dari simpul ke-6-8 dan seterusnya. Polong cepat tumbuh, hijau tua, bersinar, licin, nipis, panjang 15-20 cm, 5-bermatang dan kekal lembut selama 3-4 hari.

Ia mempunyai rintangan medan terhadap YVMV dan toleransi kepada jassid dan cacing cotton boll. Ia sesuai untuk penanaman semasa musim bunga/musim panas dan musim hujan di bawah keadaan utara India. Potensi hasil ialah 100-125 q/ha buah hijau dan 12.5 q/ha biji benih. Ia telah dimaklumkan oleh jawatankuasa benih pusat pada tahun 1983 untuk penanaman am.

Gujarat Bhindi-1:

Ia telah dibangunkan di Universiti Pertanian Gujarat pada tahun 1983. Ia adalah pemilihan garis tulen daripada sampel benih pukal yang tidak diketahui yang diterima daripada IARI, New Delhi. Tumbuhan adalah kira-kira 60 cm tinggi .pada musim panas dan 90 cm pada musim hujan. Terdapat warna ungu pada batang. Daunnya luas, hijau gelap dengan warna ungu pada urat. Berbuah bermula dari simpul ke-4-5. Buah-buahan berbujur 5, panjang 14-15 cm dan lilit 6-7 cm. Hasil pod hijau adalah kira-kira 70 q/ha. Ia telah dimaklumkan oleh jawatankuasa benih pusat.

‘Perkins Long Green’ atau Sel-6 asal telah dinamakan sebagai Harbhajan dalam ingatan Saintis Sayuran yang paling berdedikasi, Dr Harbhajan Singh dari IARI, New Delhi oleh T.A. Thomas dan R. Prasad. Tumbuhan sangat tinggi, tebal dan pembawa prolifik. Daunnya besar, sederhana lobed dengan permukaan kasar dan urat menonjol. Buahnya panjang, tirus, hijau terang, tidak berduri dan kebanyakannya bermata 8. Ia dimaklumkan oleh jawatankuasa keluaran varieti pusat.

Ia telah dikembangkan oleh H.B. Singh dan rakan-rakannya pada 1973-74 di IARI, New Delhi. Ia adalah terbitan salib (Pusa Sawani Best-1) x (Pusa Sawani x IC 7194). Tumbuhan adalah 110 cm tinggi dengan kecenderungan bercabang sekali-sekala. Bunga mempunyai warna dasar kelopak ungu.

Buah-buahan berwarna hijau, panjang, bermata 5, lembut dan boleh didapati di pasaran selepas 50 hari disemai. Tempoh penuaian ialah 40-50 hari. Ia bertolak ansur dengan YVMV. Potensi hasil buah hijau adalah kira-kira 100 q/ha. Ia telah dikenal pasti oleh projek penyelidikan diselaraskan semua India mengenai sayur-sayuran pada tahun 1985.

Parbhani Kranti:

Ia adalah varieti tahan YVM yang dikembangkan oleh N.D. Jambhale dan Y.S. Nerkar dari Universiti Pertanian Maratha Wada, Parbhani pada tahun 1985 daripada persilangan interspesifik antara A. esculentus cv. ‘Pusa Sawani’ dan A. manihot, spesies Afrika yang membawa tentangan terhadap YVMV. BC2 dengan Pusa Sawani telah dikenakan kendiri dan pemilihan sehingga F8.

Tumbuhannya tinggi, bertangkai tunggal dengan dedaunan hijau gelap. Daun berlobus dalam dengan risalah sempit di bahagian 1/3 bahagian atas. Tangkai buah berbentuk corong. Buah pertama ditanggung pada nod ke-5-6. Saiz buah yang boleh dipasarkan (8-9 cm) dicapai 7-8 hari selepas antesis. Buahnya sangat hijau tua, licin, lembut, langsing, 5-bermatang dengan hujung yang panjang dan sempit.

Secara purata, hasil buah hijau ialah 85-90 q/ha semasa musim panas dan 115 q/ha semasa musim hujan. Hasil benih 10 q/ha daripada tanaman musim hujan dan 5-6 q/ha daripada tanaman musim panas adalah mungkin. Ia telah dimaklumkan oleh jawatankuasa benih pusat pada tahun 1986 untuk penanaman di seluruh negara. Kini ia terdedah kepada YVMV.

Ia adalah varieti tahan virus YVM yang dibangunkan oleh M.R. Thakur dan S.K. Arora pada tahun 1985 di PAU, Ludhiana dari persilangan antara A. esculentus cv. ‘Pusa Sawani’ dan A. manihot ssp. manihot, spesies dari Ghana yang membawa rintangan kepada YVM. F1 telah berpaling ke belakang ke ‘Pusa Sawani’ empat kali dan pemilihan telah diamalkan dalam generasi selfing sehingga F8.

Tumbuhan adalah sederhana tinggi dengan ruas pendek dan tumbuh sehingga 105 cm pada musim hujan dan 85 cm pada musim bunga. Batang membawa percikan pigmentasi. Daun berlobus dalam sehingga ke pangkal tangkai daun dan pinggir daun kurang bergerigi. Bahagian basal tangkai daun berpigmen dalam. Batang, daun dan tangkai daun jarang berbulu. Buah-buahan sederhana panjang, hijau, lembut dan 5-bujur.

Bahagian atas buah tumpul dan sedikit berkerut. Ia berbunga dalam masa kira-kira 45-50 hari dan sedia untuk dipetik pertama selepas 54 hari disemai. Buah pertama ditanggung pada nod ke-5-6. Potensi hasil adalah kira-kira 95 q/ha semasa musim hujan dan 50 q/ha semasa musim bunga. Secara purata, ia menghasilkan 4-8 q benih/ha.

Sel 10 (Arka Anamika):

Ia adalah varieti tahan virus YVM yang dikembangkan oleh O.P. Dutta dan kumpulannya pada tahun 1984 di IIHR, Bangalore. Ia adalah asal interspesifik antara A. esculentus dan spesies liar A. manihot ssp. tetraphyllus. Tumbuhan adalah sederhana tinggi (kira-kira 100 cm) dengan panjang antara nod pendek dan kurang bercabang.

Percikan pigmentasi ungu terdapat pada batang, tangkai daun dan permukaan bawah daun basal. Daun berwarna hijau, kecil dan lobed dalam. Batang, tangkai daun dan daun jarang berbulu. Buah-buahan berwarna hijau sederhana, kasar, berbujur 5 dan bermula selepas nod ke-5-6 dan seterusnya. Potensi hasil ialah 115 q/ha buah hijau. Ia telah dikenal pasti untuk penanaman umum oleh projek pembaikan sayur-sayuran diselaraskan semua India pada tahun 1990.

Ia telah dibangunkan oleh B.R. Sharma dan S.K. Arora pada tahun 1989 di PAU, Ludhiana. Ia adalah mutan teraruh yang berasal daripada Pusa Sawani yang dirawat dengan 1% EMS. Pemilihan terakhir dibuat dalam M8 generasi.

Tumbuhan adalah tinggi. Batang, tangkai daun, dan bahagian basal permukaan bawah daun mempunyai percikan pigmentasi ungu. Buahnya sederhana panjang, nipis, lembut, hijau dan bermata 5. Ia mempunyai rintangan medan terhadap YVMV dan toleransi kepada pengorek buah. Secara purata, ia memberikan 95 q/ha hasil yang boleh dipasarkan bagi buah hijau.

Varieti ini telah dikeluarkan oleh IARI pada tahun 1994 sebagai pengganti Pusa Sawani. Tumbuhan berwarna hijau tua dengan pigmentasi jarang (kadang-kadang) pada batang dan tangkai daun, dengan biasanya batang tunggal mempunyai ruas pendek (2-4 cm). Daunnya lebar dan lobus sederhana.

Buah-buahan adalah 5-bujur, menarik berwarna hijau tua, 12-15 cm panjang mempunyai jangka hayat yang sangat baik. Ia tahan terhadap YVMV dan bertolak ansur dengan jassid dan pengorek pucuk dan buah. Hasil buah hijau semasa musim panas berkisar antara 10-12 tan/ha manakala semasa kharif dan akhir kharif ia boleh memberikan hasil yang lebih tinggi. Ia juga bertindak balas kepada pemangkasan untuk memanjangkan tanaman musim panas untuk penuaian tambahan semasa musim kharif.

Varieti ini telah dikeluarkan oleh IIHR, Bangalore sebagai tahan terhadap YVMV. Ia adalah keturunan saudara perempuan Arka Anamika. Tumbuhan menyerupai Arka Anamika dari segi rupa serta rintangan YVMV. Ia mempunyai toleransi kepada pengorek buah dan mungkin sesuai dengan pemangkasan untuk tanaman ratun.

Dibangunkan oleh IIVR, Varanasi, tumbuhan setinggi 110-140 cm, bunga pada nod ke-4-5 semasa musim panas dan nod ke-5-7 semasa musim hujan, buah-buahan lima berujung, buah 11 -12 cm panjang, hasil pod 130-150 q/ha, bertolak ansur dengan YVMV di bawah keadaan lapangan.

Dibangunkan oleh IIVR, Varanasi, tumbuhan setinggi 130-175 cm dengan purata 2 dahan/pokok berkesan, berbunga pada simpul ke-4 selepas 36-38 hari selepas disemai pada musim hujan, buah 8-10 cm panjang, 23-25 ​​buah/pokok, 150-180 q/ha hasil, sangat bertolak ansur dengan YVMO.

Varieti ini telah dibangunkan oleh Universiti Pertanian Haryana, Hisar dari salib, Lam Selection 1 x Parbhani Kranti mengikut kaedah pemilihan silsilah. Ia dikeluarkan pada tahun 1992 dan dimaklumkan pada tahun 1995 oleh Jawatankuasa Kecil Pusat mengenai Piawaian Tanaman. Ia mempunyai ketahanan terhadap YVMV dan toleransi ladang terhadap corong daun dan sesuai dengan hujan yang terdedah kepada penyakit serta musim bunga musim panas yang bebas penyakit.

Tumbuhan adalah sederhana tinggi (90-120 cm) dengan ruas pendek, menghasilkan 2-3 cabang setiap satu. Petiole berpigmen. Ia mengambil masa 40 hari untuk berbunga pertama dan 50 hari untuk memetik pertama. Pemberian buah bermula dari nod ke-4. Buahnya licin, hijau tua, menarik dengan hujung tirus panjang dan berukuran 18-20 cm apabila matang penuh. Purata bilangan biji setiap buah ialah 55-60 biji. Ia adalah pembawa prolifik dengan purata hasil buah 10 tan/ha.

Dibangunkan oleh Universiti Pertanian Haryana, Hisar dari salib, Se.1 2-2 x Parbhani Kranti, telah dikeluarkan oleh Jawatankuasa Pelepasan Varieti Pusat dan dimaklumkan pada tahun 1996. Ia tahan terhadap YVMV, awal (pemetik pertama dalam 46-47 hari ) dan pelbagai hasil tinggi (12-13 tan/ha buah-buahan hijau).

Tumbuhan sederhana tinggi dengan ruas pendek menghasilkan 3-4 cabang setiap satu.Dedaunan berwarna hijau, tangkai daun kadang-kadang berpigmen. Tapak kelopak berpigmen pada bahagian dalam sahaja. Buah-buahan berwarna hijau, menarik, 5 bermatang dan berukuran 15-16 cm panjang apabila matang penuh. Ia sesuai untuk ditanam semasa musim panas dan juga musim hujan.

Kacukan terkemuka syarikat benih sektor swasta di India ialah Mahyco 10, Mahyco 64, Sonal, Avantika, Syn 16, Syn 152, KVS 215 dan KVS 577. Pasaran bendi hibrid agak dinamik.

Kacukan untuk terus hidup dalam pasaran harus sangat bertolak ansur dengan YVMV bersama-sama dengan ciri lain yang diingini, seperti buah hijau berkilat atau hijau tua, ruas yang lebih pendek, buah tanpa biji membonjol dan bebas daripada cincin kuning di pangkal. Polong harus licin dan mudah dituai. Pasaran okra hibrid akan menjadi sangat kompetitif.


Ekologi Penyakit Invertebrata. Edisi No 1

Bidang antara disiplin yang berkembang pesat, ekologi penyakit menggabungkan idea utama daripada ekologi, perubatan, genetik, imunologi dan epidemiologi untuk mengkaji cara perumah dan patogen berinteraksi dalam populasi, komuniti dan keseluruhan ekosistem. Menghimpunkan sumbangan daripada pakar antarabangsa terkemuka mengenai ekologi penyakit dalam kalangan spesies invertebrata, buku ini memberikan penilaian menyeluruh tentang keadaan semasa bidang tersebut. Bermula dengan gambaran umum pengenalan prinsip dan metodologi umum, buku ini diteruskan dengan perbincangan mendalam tentang pelbagai isu kritikal berkenaan epidemiologi penyakit invertebrata, biologi molekul, vektor dan patogen. Topik yang dibincangkan secara terperinci termasuk:

  • Kaedah untuk mengkaji ekologi penyakit invertebrata dan patogen
  • Ekologi patogen invertebrata dan ekologi kumpulan patogen
  • Ekologi gunaan patogen invertebrata
  • Memanfaatkan ekologi patogen invertebrata dalam kawalan mikrob
  • Pencegahan dan pengurusan penyakit berjangkit invertebrata akuatik

Ekologi Penyakit Invertebrata adalah tambahan yang perlu dan sudah lama tertunggak kepada kesusasteraan dunia mengenai subjek yang sangat penting ini. Jilid ini tergolong dalam rak rujukan semua yang terlibat dalam sains alam sekitar, genetik, mikrobiologi, biologi marin, imunologi, epidemiologi, sains perikanan dan hidupan liar, serta disiplin berkaitan.

Senarai Penyumbang xvii

Bahagian I Pengenalan 1

1 Konsep Umum dalam Ekologi Penyakit Invertebrata 3
Ann E. Hajek dan David I. Shapiro-Ilan

1.1.2 Istilah dan Ukuran 5

1.1.2.1 Prevalens/Insiden 5

1.1.2.2 Patogenisiti/Virulensi 5

1.1.2.3 Jangkitan/Infektiviti 6

1.1.2.6 Penyakit Epizootik dan Enzootik 7

1.1.2.7 Kitaran Jangkitan 8

1.1.2.8 R0 dan Ambang Ketumpatan Hos 10

1.1.3 Faktor-Faktor Yang Mempengaruhi Ekologi Penyakit Invertebrata 11

1.3 Mengapa Mengkaji Ekologi Penyakit Invertebrata? 13

1.4 Kandungan Buku ini 14

2 Kaedah untuk Mengkaji Ekologi Penyakit Invertebrata dan Patogen 19
Raquel Campos-Herrera dan Lawrence A. Lacey

2.2 Kaedah Tradisional untuk Mengkaji Penyakit 19

2.2.3.1 Mencari Serangga Yang Dijangkiti Menggunakan Kaedah Persampelan Entomologi Am 23

2.2.3.3 Kaedah Pengekstrakan 24

2.2.3.4 Persampelan Spora Bawaan Udara 24

2.2.3.6 Penyebaran Entomopatogen: Kaedah Tanda–Pelepas–Tangkap Semula 25

2.3 Alat Molekul untuk Membantu dalam Pengesanan dan Kuantifikasi Patogen dan Kesannya terhadap Perumah 25

2.3.1 Penggunaan Protein: Permulaan Era Molekul dalam Patologi Invertebrata 26

2.3.2 Teknik Berdasarkan Asid Nukleik: Era “Pra ]Omics” 27

2.3.3 Teknik Lanjutan: qPCR, NGS, dan Ketibaan  ]Era Omics 31

2.4 Kaedah Tradisional Berbanding Molekul: Kelebihan dan Had 33

2.5 Memajukan Sempadan Ekologi menggunakan Patogen dan Penyakit 36

Bahagian II Asas Ekologi Patogen Invertebrata 49

3 Populasi Patogen 51
Leellen F. Solter dan James J. Becnel

3.2 Ciri-ciri Patogen 51

3.2.1 Invasif dan Infektiviti 52

3.2.1.2 Penubuhan Jangkitan dan Tropisme Tisu 54

3.2.2 Patogenisiti, Virulensi dan Replikasi Patogen 55

3.2.2.1 Faktor Virulensi 57

3.2.2.2 Pengecilan atau Peningkatan Virulensi 58

3.2.4 Patogen Obligat, Opportunistik dan Fakultatif 60

3.2.5.1 Penghantaran Mendatar 61

3.2.5.2 Penghantaran Menegak 62

3.2.5.3 Penghantaran Tidak Langsung 63

3.2.6 Kebolehubahan Genetik dan Potensi untuk Evolusi Bersama dengan Hos 64

3.2.6.1 Spesies dan Strain 64

3.3 Kesan Patogen terhadap Perkembangan dan Tingkah Laku Perumah 66

3.4 Populasi Patogen 67

3.4.1 Ketumpatan ]Patogen Bergantung 67

3.4.2 Ketumpatan ]Patogen Bebas 68

3.4.3 Kegigihan Patogen dalam Populasi Perumah 68

3.4.3.1 Jangkitan Kronik dan Penghantaran Menegak 69

3.4.3.2 Hos Alternatif dan Ganti/Perantaraan 69

3.4.3.3 Kemandirian Patogen dalam Kadaver dan Tisu Tumbuhan 70

3.4.3.4 Latensi dalam Populasi Hos 70

3.4.4 Kegigihan Peringkat Patogen dalam Persekitaran 71

3.5 Penyebaran dan Taburan Spatial Patogen 72

3.5.1 Faktor Fizikal: Angin dan Penyerakan Air 73

3.5.2 Faktor Biologi 73

3.5.3 Taburan Ruang 74

3.6 Interaksi Patogen 75

3.6.1 Interaksi dengan Agen Biologi lain 75

3.6.2 Interaksi dengan Racun Perosak dan Bahan Kimia lain 77

4 Populasi Tuan Rumah 101
Louela A. Castrillo

4.2 Faktor Hos Umum 103

4.2.1 Laluan Pemerolehan Patogen 103

4.2.2 Spesies Serangga, Peringkat Kehidupan, Umur dan Jantina 103

4.2.3 Kepadatan Penduduk 104

4.3 Halangan kepada Jangkitan Mikrob 105

4.3.1 Integumen Serangga 105

4.3.3.1 Membran Peritrofik dan Lamina Basal 108

4.3.3.2 Keadaan dalam Lumen Usus 108

4.3.3.3 Pengelupasan Sel Epidermis yang Dijangkiti 109

4.4 Pertahanan terhadap Jangkitan Mikrob 110

4.4.1 Sistem Imun Semula Jadi 110

4.4.1.1 Kekebalan Semula Jadi Konstitutif: Kekebalan Selular 110

4.4.1.2 Kekebalan Semula Jadi Konstitutif: Phenoloxidase 113

4.4.1.3 Kekebalan Semula Jadi Teraruh: Spesies Oksigen Reaktif 113

4.4.1.4 Kekebalan Semula Jadi Teraruh: Peptida Antimikrob 114

4.4.2 Mikrobiom ]Pertahanan Berasaskan 117

4.4.2.2 Simbion Intraselular 118

4.4.3 Pertahanan Tingkah Laku 119

4.4.3.1 Mengelak/Mengelak 120

4.4.3.2 Dandanan dan Tingkah Laku Kebersihan 121

4.4.3.3 Diet ]Berasaskan Pertahanan Prophylactic dan Terapeutik 122

4.4.3.4 Termoregulasi 123

4.4.3.5 Pemendapan Sebatian Antimikrob 123

4.5 Rintangan melalui Priming 124

5 Faktor Abiotik 143
Dana Ment, Ikkei Shikano dan Itamar Glazer

5.2 Unit Yang Masih Hidup 143

5.3 Faktor Abiotik yang Mempengaruhi Patogen Invertebrata 146

5.3.2 Kelembapan dan Kelembapan 152

5.3.3 Sinaran Ultraviolet 156

5.3.5 Ciri Habitat Lain 162

5.4 Mekanisme Kemandirian 165

6 Persekitaran Biotik 187
Jenny S. Cory dan Pauline S. Deschodt

6.2 Interaksi Tritropik 188

6.2.1 Kerumitan Selanjutnya 190

6.3 Patogen– Interaksi Musuh Semulajadi 191

6.3.1 Interaksi Entomopatogen–Entomopatogen 191

6.3.2 Interaksi Entomopatogen–Parasitoid 195

6.3.2.1 Kesan Patogen Terhadap Parasitoid 195

6.3.2.2 Kesan Parasitoid Terhadap Patogen 197

6.3.2.3 Kesan Tahap Penduduk 198

6.3.3 Interaksi Patogen–Pemangsa 199

6.4 Pertahanan Pengantaraan Mikrob 200

6.4.1 Simbion Warisan 201

6.4.2 Adakah Mikroflora Usus Mempengaruhi Kecenderungan Patogen? 202

6.4.3 Hala Tuju Masa Depan 204

Bahagian III Ekologi Kumpulan Patogen 213

7 Virus 215
Trevor Williams

7.2 Kepelbagaian Virus Patogen Invertebrata 216

7.3 Taburan Virus Patogen Invertebrata 219

7.4 Aspek Utama Ekologi Patogen 220

7.5.1 Penghantaran Mendatar 221

7.5.1.1 Menganggar Penghantaran Mendatar 223

7.5.2 Penghantaran Menegak 223

7.6.1 Kegigihan dalam Hos 225

7.6.2 Kegigihan Di Luar Hos 226

7.6.2.1 Kegigihan pada Tumbuhan 227

7.6.2.2 Kegigihan dalam Tanah 229

7.6.2.3 Kegigihan dalam Air 230

7.7.1 Hos ]Penybaran Berantara 231

7.7.2 Faktor Persekitaran yang Terlibat dalam Penyerakan 232

7.7.3 Faktor Biotik yang Membantu Penyebaran Virus 233

7.7.4 Amalan Pertanian yang Mempengaruhi Penyebaran 234

7.7.5 Corak Spatial Penyerakan 235

7.8 Kepelbagaian Genetik dalam Virus 235

7.8.1 Kepelbagaian Genetik Berleluasa dalam Populasi Virus 235

7.8.2 Kepelbagaian Genetik Mengutamakan Kemandirian Virus 237

7.8.3 Apakah yang Menjana Kepelbagaian Genetik Terlalu Banyak? 238

7.8.4 Bagaimanakah Kepelbagaian Genetik Ditransmisikan? 239

7.9 Peranan Tingkah Laku Perumah dalam Ekologi Virus 240

7.9.1 Keputusan Mencari Makanan: Apa dan Tempat Makan 240

7.9.2 Risiko Kanibalisme 241

7.9.3 Penyakit Virus Berjangkit Seksual 241

7.9.4 Akibat Ekologi Manipulasi Perumah oleh Virus 242

7.9.4.1 Asas Molekul untuk Manipulasi Perumah 243

7.10 Dinamik Virus dalam Populasi Hos 244

7.10.1 Virus Patogen Boleh Mengawal Penduduk 244

7.10.2 Ciri-ciri Ekosistem yang Mengutamakan Penghantaran Virus 246

7.10.3 Perubahan Iklim dan Dinamik Populasi Serangga–Virus 247

7.11 Pengaruh Faktor Abiotik terhadap Virus 248

7.11.1 Kesan Cahaya Ultraviolet pada Virus 248

7.11.2 Kesan Bermusim terhadap Virus 250

7.11.3 Kesan Suhu pada Virus 250

7.11.4 Kelembapan, Kelembapan dan Kerpasan 251

7.11.5 Kesan pH terhadap Virus 251

7.12 Faktor Biotik yang Berinteraksi dengan Populasi Virus 253

7.12.1 Fenologi Tumbuhan, Struktur, dan Nilai Pemakanan 253

7.12.2 Interaksi Fitokimia–Virus 253

7.12.3 Interaksi Virus dengan Hos Alternatif 254

7.12.4 Persaingan dan Kemudahan dalam Interaksi Virus dengan Organisma Lain 255

7.12.4.1 Interaksi Virus dengan Parasitoid 255

7.12.4.2 Interaksi Virus dengan Patogen Lain 257

7.12.4.3 Interaksi Virus dengan Mikrobiota 258

8 Bakteria 287
Trevor A. Jackson, Colin Berry dan Maureen O'Callaghan

8.2 Patogen Bakteria dan Persatuan dengan Serangga 288

8.3 Kepatogenan dan Keganasan 294

8.4 Penghantaran Penyakit 300

8.5 Kemandirian dalam Persekitaran 301

8.5.2 Persekitaran Berair 304

8.5.3 Pada Phylloplane dan Dalam Planta 304

8.6 Dinamik Populasi: Epizootik dan Enzootik 305

8.8 Bimbingan Ekologi Penggunaan Entomopatogen Bakteria dalam Kawalan Mikrob 309

9 Kulat 327
Ann E. Hajek dan Nicolai V. Meyling

9.1.1 Sistematik dan Taksonomi Kulat 328

9.1.2 Perkaitan Sistematik dan Taksonomi Kulat dalam Ekologi 330

9.2 Biologi dan Patologi Kulat 331

9.2.1 Biologi dan Patologi Kumpulan Utama Patogen Kulat 331

9.2.1.1 Entomophthoromycotina, Entomophthorales 331

9.2.1.2 Ascomycota, Hypocreales 333

9.2.2 Corak Taburan dan Persatuan Habitat Kulat Patogen Invertebrata 334

9.2.2.1 Corak Kelimpahan dan Taburan Kulat: Pandangan daripada Penggunaan Penanda Molekul 335

9.2.3 Faktor-faktor yang Mentadbir Corak Kepelbagaian Patogen Kulat 337

9.3 Dinamik Patogen Kulat 338

9.3.1 Penghantaran Penyakit 338

9.3.3 Kemandirian dan Kegigihan Persekitaran Kulat 341

9.3.4 Kesan Terhadap Kepadatan Populasi Tuan Rumah Terhadap Ruang dan Masa 342

9.4 Interaksi antara Patogen Kulat dan Individu Hos 344

9.4.1 Maklum Balas Perumah kepada Patogen Kulat untuk Mencegah atau Menyembuhkan Jangkitan 344

9.5 Kesan Faktor Abiotik terhadap Perumah yang Dijangkiti dan Inokula Patogen 347

9.6 Kesan Faktor Biotik terhadap Kulat Patogen 349

9.6.1 Persatuan Endofit dan Rhizosfera Patogen Kulat Invertebrata 349

9.6.1.1 Kejadian Semulajadi dan Taburan Kulat Patogen Invertebrata Sebagai Rakan Tumbuhan 350

9.6.1.2 Inokulasi Eksperimen Tumbuhan dengan Kulat Entomopatogen 351

9.6.1.3 Interaksi Kulat Langsung dan Tidak Langsung dengan Serangga dan Tumbuhan 352

9.6.2 Interaksi antara Symbionts Hos dan Patogen Kulat 353

9.6.3 Interaksi antara Patogen Kulat dan Musuh Semulajadi Lain 354

9.6.3.1 Interaksi antara Co ]yang menjangkiti Patogen 355

9.6.3.2 Interaksi Patogen Kulat dengan Parasitoid dan Pemangsa 356

9.6.4 Mikoparasitisme Patogen Kulat 357

9.7 Penggunaan Kulat Patogen untuk Kawalan Biologi Invertebrata 358

10 Mikrosporidia 379
Gernot Hoch dan Leellen F. Solter

10.1.1 Mekanisme Jangkitan 380

10.1.2 Kitaran Hidup Mikrosporidian 381

10.2.1 Kerentanan kepada Mikrosporidiosis 383

10.2.3 Tindak Balas Tingkah Laku 384

10.3 Populasi Patogen 385

10.3.1 Keganasan Patogen Mikrosporidian 385

10.3.2 Kekhususan Hos 386

10.3.2.1 Kekhususan Hos Fisiologi lwn Ekologi 386

10.3.2.3 Hos Ganti 387

10.3.2.4 Mikrosporidia Merentasi Halangan Invertebrata–Vertebrata 387

10.3.3 Kegigihan dalam Persekitaran 388

10.4.1 Penghantaran Mendatar 390

10.4.1.1 Penghantaran daripada Hos Hidup 390

10.4.1.2 Penghantaran selepas Kematian Hos 392

10.4.1.3 Penghantaran oleh Vektor Parasitoid 393

10.4.1.4 Kesan Pembangunan Hos dan Interaksi Hos–Microsporidia terhadap Penghantaran 393

10.4.2 Penghantaran Menegak 394

10.5.1 Kelaziman Mikrosporidian dalam Populasi Invertebrata dan Kesan terhadap Populasi Hos 397

10.5.2 Mikrosporidia dalam Serangga Terkultur 398

10.5.3 Mikrosporidia sebagai Agen Kawalan Biologi Berpotensi 399

11 Nematod 415
David I. Shapiro-Ilan, Ivan Hiltpold dan Edwin E. Lewis

11.1.1 Kepelbagaian dan Sejarah Kehidupan 415

11.1.2 Pengagihan EPN 420

11.4 Populasi Patogen 422

11.4.1 Patogenisiti dan Keganasan 422

11.4.2 Kegigihan dan Kitar Semula 423

11.4.3 Kelakuan Bersurai dan Mencari Makanan 423

11.5 Faktor Persekitaran Abiotik 424

11.5.2 Suhu Tanah 425

11.5.3 Ciri Tanah dan Kimia 425

11.5.4 Cahaya Ultraviolet 426

11.6 Interaksi Biotik 426

11.6.1 Interaksi dengan Pemangsa dan Patogen, Termasuk Pertandingan Intraguild 426

11.6.2 Isyarat Digunakan dalam Hos ]Pencarian dan Navigasi 427

11.6.3 Interaksi Tri ]trofik (Tumbuhan, Serangga, Nematod) 427

11.7 Ekologi Gunaan dan Aspek dalam Kawalan Mikrob 427

11.7.1 Pengeluaran, Rumusan dan Aplikasi 427

11.7.2 Pendekatan Kawalan Mikrob 428

Bahagian IV Ekologi Gunaan Patogen Invertebrata 441

12 Memodelkan Epizootik Serangga dan Akibat Peringkat Populasinya 443
Bret D. Elderd

12.2 Patogen dan Perumahnya 445

12.3 Memodelkan Penghantaran Penyakit: Epizootik Tunggal 447

12.3.1 Model Fenomenologi dan Mekanistik 448

12.4 Memasang Model pada Data 450

12.4.1 Kriteria Maklumat Akaike 451

12.4.2 Contoh AIC dalam Tindakan 452

12.5 Pendekatan Bayesian 453

12.5.1 Memasang Model Bayesian 454

12.5.2 Contoh WAIC dalam Tindakan 456

12.6 Dinamik Jangka Panjang 457

12.6.1 Dinamik Jangka Panjang: Menghadapi Model dengan Data 458

12.6.2 Masa ]Siri Diagnostik 459

12.7 Mengubah suai dan Menggunakan Model 462

13 Memanfaatkan Ekologi Patogen Invertebrata dalam Kawalan Mikrob 469
Surendra K. Dara, Tarryn A. Goble dan David I. Shapiro-Ilan

13.1 Asas Kawalan dan Pendekatan Mikrob 469

13.1.1 Kawalan Mikrob Klasik 469

13.1.2 Pelepasan Inokulasi 471

13.1.3 Siaran Inundatif 472

13.1.4 Pemuliharaan/Manipulasi Alam Sekitar 472

13.2 Pertimbangan Ekologi 472

13.2.1 Kekhususan Hos 472

13.2.2 Keupayaan Bersurai 473

13.2.4 Ketumpatan Patogen 473

13.2.5 Hos ]Faktor Berkaitan 474

13.2.7 Kegigihan Alam Sekitar 475

13.3 Kaedah untuk Meningkatkan Kawalan Mikrob 476

13.3.1 Memperbaiki Organisma sebagai Agen Kawalan Mikrob 476

13.3.2 Memperbaiki Kaedah Pengeluaran 477

13.3.3 Meningkatkan Teknologi Formulasi dan Aplikasi 478

13.3.4 Memperbaiki Alam Sekitar 479

13.4 Menggabungkan Kawalan Mikrob ke dalam Sistem Pengurusan Perosak Bersepadu 480

13.4.1 Isu Kawal Selia 480

13.4.2 Pendekatan Bersendirian lwn. Bersepadu 481

14 Pencegahan dan Pengurusan Penyakit dalam Invertebrata Daratan 495
Jørgen Eilenberg dan Annette Bruun Jensen

14.1.1 Jenis Kemudahan Pengeluaran 496

14.1.2 Penghantaran Penyakit Serangga dalam Kemudahan Pengeluaran 499

14.2 Kegunaan utama Serangga dan Hama dalam Pengeluaran dan Penghantaran Patogen Serangga dalam Sistem Pengeluaran 500

14.2.1 Pendebungaan dan Pengeluaran Madu 500

14.2.3 Kawalan Biologi 509

14.2.4 Pengeluaran Serangga untuk Makanan dan Makanan 512

14.3 Status Perkhidmatan Diagnostik 516

14.4 Memastikan Pengeluaran Serangga Sihat 516

15 Pencegahan dan Pengurusan Penyakit Berjangkit dalam Invertebrata Akuatik 527
Jeffrey D. Shields

15.1.1 Pelbagai Patogen Menjangkiti Invertebrata Akuatik 527

15.1.2 Gambaran Keseluruhan Isu Penyakit dalam Menilai Epidemik dalam Invertebrata Akuatik 531

15.3 Penyakit Krustasea 543

15.3.1 Wabak dalam Akuakultur Udang 544

15.3.2 Pengurusan Penyakit dalam Akuakultur Udang 548

15.3.2.1 Menukar Spesies dan Patogen Khusus ]Bebas (SPF) Stok 549

15.3.2.3 Pembangunan “Vaksin” 551

15.3.2.4 Kawalan Ekologi dan Biologi 551

15.3.3 Udang dan Krebspest 552

15.3.4 Kemunculan Penyakit dalam Budaya Ketam Sarung Cina 553

15.4 Perikanan Krustasea 554

15.4.1 Ketam Salji dan Penyakit Ketam Pahit 555

15.4.2 Penyakit Cangkang Udang Udang dan Epizootik Amerika 556

15.4.3 Lobster Berduri dan PaV1 559

15.5 Agensi untuk Pengurusan Penyakit 560

16 Ekologi Penyakit Berjangkit Invertebrata Baru Muncul 587
Colleen A. Burge, Amanda Shore-Maggio dan Natalie D. Rivlin

16.2 Hubungan Hos–Patogen dan Perubahan Antropogenik 593

16.2.1 Konteks Ekologi Hubungan Perumah Invertebrata–Patogen 593

16.2.2 Perubahan Antropogenik dan Kemunculan Penyakit 594

16.2.2.2 Faktor Patogen 595

16.2.2.3 Faktor Persekitaran 595

16.3 Kajian Kes Kemunculan Penyakit Invertebrata 596

16.3.1 Jangkitan Herpesvirus Molluscan pada Bivalvia 597

16.3.1.1 OsHVÂ ]1 Jangkitan Tiram Pasifik dan Bivalvia Lain 598

16.3.2 Penyakit Nekrosis Hepatopankreatik Akut Udang 601

16.3.3 Densovirus Muncul Arthropod dan Echinoderms 603

16.3.3.1 Acheta domesticus Densovirus 603

16.3.3.2 Sea Star ]Asosiasi Densovirus 604

16.3.4 Patogen Pendebunga Muncul 605

16.3.4.1 Pemusnah Varroa dan Virus Sayap Cacat 606

16.3.4.2 Tumpahan dan penyebaran Nosema ceranae 607

16.3.4.3 Pelbagai ]tekanan, Kematian Lebah dan Langkah Kawalan 608

16.3.5 Penyakit Karang Muncul 608

16.3.5.1 Penyakit Jalur Hitam 609

16.3.5.2 Serratosis Acroporid 610

16.3.5.3 Masalah Menghadapi Penyiasatan Penyakit Karang 610

17 Kesimpulan dan Hala Tuju Masa Depan 627
David Shapiro-Ilan dan Ann E. Hajek

17.1 Meningkatnya Kesegeraan Kajian Ekologi Patogen Invertebrata 627

17.1.1 Keselamatan Makanan dan Peranan Kawalan Mikrob 627

17.1.2 Pemuliharaan Organisma Berfaedah 628

17.2 Masa Depan untuk Patogen Invasif dan Invertebrata Asli 629

17.3 Arah Baru dan Alat Novel untuk Mengkaji Ekologi Invertebrata 630


Tonton video: SAINS TINGKATAN 1: PENDEBUNGAAN (Februari 2023).