Maklumat

Apakah jenis lalat ini?

Apakah jenis lalat ini?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Saya dapati lelaki ini melepak di sinki saya, tetapi dia tidak terbang apabila saya meletakkan pinggan di dalam sinki. Ternyata sudah mati. Bahagian depan kelihatan betul-betul seperti lalat rumah. Tetapi, saya tidak pernah melihat bahagian belakang (perut) seperti ini. Ada idea?


Ini mungkin lalat yang dibunuh oleh kulat Entomophthora muscae (atau berkait rapat) atau mungkin kulat Cordyceps. Kulat jenis ini menyerang serangga, dan kadang-kadang anda melihat serangan seperti perut yang putih dan bengkak pada lalat.


(Gambar jangkitan biasa, dari bugguide.net)

Kulat ini juga diketahui mengubah tingkah laku individu yang dijangkiti, supaya mereka mis. memanjat tanaman tinggi untuk mati (kadang-kadang disebut "zombie-serangga"), untuk memungkinkan penyebaran dan penyebaran spora kulat yang lebih baik. Banyak maklumat tentang pengubahsuaian tingkah laku perumah oleh kulat boleh didapati di Roy et al. (2006), tetapi mereka boleh melibatkan pendakian ke lokasi yang terdedah dan mekanisme khas untuk penahanan tuan rumah semasa kematian:

Dalam banyak kes, interaksi akhir, atau permainan akhir, antara host dan patogen melibatkan pengubahsuaian tingkah laku yang kompleks seperti serangga yang dijangkiti mencari kedudukan tinggi di mana arus angin dapat menyebarkan konidia dengan berkesan. Peningkatan ketinggian oleh serangga pada tahap akhir jangkitan adalah fenomena biasa yang diakui oleh ahli patologi serangga awal yang mencatat bahawa larva lepidopteran yang berpenyakit, seperti Lymantria monacha (ngengat biarawati), yang dijangkiti bakulovirus berpindah ke puncak pokok di mana mereka mati ( 94). Tingkah laku yang diubah host ini dinamakan "Wipfelkrankheit" atau "Wipfelsucht" (yang bermaksud penyakit puncak pokok dalam bahasa Jerman) untuk penyakit virus (41) dan "penyakit puncak" untuk penyakit kulat (24, 57, 106).

dan

Sebilangan fungi tidak menghasilkan rhizoid, tetapi inang ditahan secara in situ oleh struktur inang sahaja, iaitu kaki atau mulut (mandibles atau stylet). Pose serangga yang mati secara amnya adalah ciri-ciri spesies patogen yang terlibat. Sebagai contoh, belalang yang dijangkiti E. grylli (Gambar 3a) dan lalat tahi kuning yang dijangkiti E. scatophagae (Gambar 3b) mencari kedudukan yang tinggi pada rumput atau tumbuh-tumbuhan lain dan berpegang erat (cengkaman kematian) dengan kakinya (96). Tipulid yang dijangkiti spesies kulat dari genera Eryniopsis dan Entomophaga juga melekat pada rumput dengan kakinya yang panjang, sering menggantungkan air (Gambar 5b, c).

Sekiranya anda melakukan carian gambar google di "Perut lalat Entomophthora"atau"terbang Cordyceps"Anda boleh lihat beberapa contoh jangkitan. Saya tidak tahu tentang spesies lalat, tetapi Musca domestica berkemungkinan besar.

Untuk beberapa contoh dan maklumat lanjut mengenai Entomophthora muscae dan kulat berkaitan lihat:

  • Roy et al. 2006. Interaksi Bizzare dan Tamat Permainan: Kulat Entomopatogen dan Hos Arthropodanya. Kajian Tahunan Entomologi 51 (1) (pdf)

  • Kawalan Biologi: Entomophthora muscae, halaman web daripada Cornell Uni.

  • Harmon. 2012. Kulat yang mengawal semut zombie mempunyai stalker kulat sendiri. Alam semula jadi

  • Kulat yang mengawal minda mengubah serangga menjadi zombi (catatan blog)


Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster adalah spesies lalat (urutan taksonomi Diptera) dalam keluarga Drosophilidae. Spesies ini sering dirujuk sebagai lalat buah, walaupun nama biasa adalah lebih tepat cuka terbang. Bermula dengan cadangan Charles W. Woodworth mengenai penggunaan spesies ini sebagai organisma model, D. melanogaster terus digunakan secara meluas untuk penyelidikan biologi dalam genetik, fisiologi, patogenesis mikroba, dan evolusi sejarah kehidupan. Pada tahun 2017, enam hadiah Nobel telah diberikan untuk penyelidikan menggunakan Drosophila. [2] [3]

D. melanogaster lazimnya digunakan dalam penyelidikan kerana kitaran hayatnya yang pantas, genetik yang agak mudah dengan hanya empat pasang kromosom, dan bilangan anak yang banyak setiap generasi. [4] Pada mulanya ia adalah spesies Afrika, dengan semua keturunan bukan Afrika mempunyai asal usul yang sama. [5] Julat geografinya merangkumi semua benua, termasuk pulau-pulau. [6] D. melanogaster adalah perosak yang biasa di rumah, restoran, dan tempat lain di mana makanan dihidangkan. [7]

Lalat milik keluarga Tephritidae juga disebut "lalat buah". Ini boleh menyebabkan kekeliruan, terutama di Mediterranean, Australia, dan Afrika Selatan, di mana buah Mediterranean terbang Ceratitis capitata adalah perosak ekonomi.


The Bombyliidae adalah keluarga besar lalat yang terdiri daripada beratus-ratus genera, tetapi kitaran hayat kebanyakan spesies kurang diketahui, atau tidak sama sekali. Saiznya berkisar dari sangat kecil (panjang 2 mm) hingga sangat besar untuk lalat (rentang sayap sekitar 40 mm). [1] [2] Apabila dalam keadaan rehat, banyak spesies memegang sayap mereka pada sudut ciri "sapu ke belakang". Orang dewasa umumnya memakan nektar dan debunga, ada yang menjadi pendebungaan penting, selalunya dengan probosik panjang yang spektakuler disesuaikan dengan tanaman seperti Lapeirousia spesies dengan tiub bunga yang sangat panjang dan sempit. Tidak seperti rama-rama, lalat lebah memegang belalainya lurus, dan tidak boleh menarik baliknya. Di bahagian East Anglia, penduduk tempatan merujuk mereka sebagai paus lebah, terima kasih kepada pelengkap seperti gading mereka. Banyak Bombyliidae menyerupai lebah dan dengan demikian nama umum yang lazim bagi anggota keluarga adalah lalat lebah. [2] Mungkin persamaannya ialah mimik Batesian, memberikan orang dewasa perlindungan daripada pemangsa.

Tahap larva adalah pemangsa atau parasitoid telur dan larva serangga lain. Betina dewasa biasanya menyimpan telur di sekitar host yang mungkin, cukup kerap di liang kumbang atau tawon / lebah bersendirian. Walaupun parasitoid serangga biasanya agak spesifik perumah, selalunya sangat spesifik perumah, sesetengah Bombyliidae bersifat oportunistik dan akan menyerang pelbagai perumah.

Bombyliidae termasuk sekurang-kurangnya 4,500 spesies yang diterangkan, dan pastinya beribu-ribu lagi masih belum diterangkan. Walau bagaimanapun, kebanyakan spesies tidak sering muncul dalam jumlah banyak, dan berbanding dengan kumpulan penyerbuk utama yang lain, mereka cenderung mengunjungi tanaman berbunga di taman bandar atau kebun pinggir bandar. Akibatnya, ini boleh dikatakan salah satu keluarga serangga yang paling kurang dikenali berbanding kekayaan spesiesnya. Keluarga ini mempunyai catatan fosil yang rapuh, dengan spesies yang diketahui dari beberapa daerah, [3] spesies tertua yang diketahui berasal dari amber Burma Kreta Tengah, berusia sekitar 99 juta tahun. [4]

Suntingan Dewasa

Walaupun morfologi lalat lembu berbeza-beza secara terperinci, kebanyakan lalat lebah dewasa dicirikan oleh beberapa butiran morfologi yang memudahkan pengecaman. Dimensi badan berbeza-beza, bergantung kepada spesies, dari 1.0 mm hingga 2.5 cm. Bentuknya selalunya padat dan integumen biasanya ditutup dengan rambut yang padat dan banyak. Pewarnaan biasanya tidak mencolok dan warna seperti coklat, kelabu kehitaman, dan warna terang seperti putih atau kuning mendominasi. Banyak spesies yang meniru Hymenoptera Apoidea. Pada spesies lain terdapat tompok rambut yang rata yang boleh bertindak sebagai cermin keperakan, warna emas atau tembaga yang mencerminkan ini mungkin berfungsi sebagai isyarat visual dalam pengenalan pasangan / saingan khusus, atau mungkin meniru partikel permukaan yang memantulkan pada tanah kosong dengan kandungan bahan yang tinggi seperti kuarza, mika atau pirit.

Kepala bulat, dengan wajah cembung, selalunya holoptik pada lelaki. Antena adalah jenis aristat yang terdiri dari tiga hingga enam segmen, dengan segmen ketiga lebih besar daripada yang lain stylus tidak ada (antena tiga segmen) atau terdiri dari satu hingga tiga flagellomeres (antena empat hingga enam segmen). Bahagian mulut diubah suai untuk menghisap dan disesuaikan untuk memberi makan pada bunga. Panjangnya sangat berbeza: sebagai contoh, Anthracinae mempunyai bahagian mulut yang pendek, dengan labium berakhir di labellum berdaging besar, di Bombyliinae di Phthiriinae, tiub jauh lebih panjang, dan di Bombyliinae lebih dari empat kali panjang kepala.

Kakinya panjang dan nipis dan kaki hadapan kadangkala lebih kecil dan lebih langsing daripada kaki tengah dan belakang. Biasanya, mereka dibekalkan dengan bulu di puncak tibia, tanpa empodia dan, kadangkala, juga tanpa pulvilli. Sayapnya telus, selalunya hyaline atau berwarna sekata atau dengan jalur. Alula berkembang dengan baik dan dalam kedudukan rehat sayap disimpan terbuka dan mendatar dalam bentuk V mendedahkan sisi perut.

Perut pada amnya pendek dan lebar, berbentuk subglobose, silinder, atau kerucut, terdiri daripada enam hingga lapan urit. Urit yang tersisa adalah sebahagian daripada struktur alat kelamin luar. Perut betina sering berakhir dengan proses berputar, digunakan dalam ovideposisi. Di Anthracinae dan Bombyliinae, diverticulum terdapat di urit kelapan, di mana telur dicampurkan dengan pasir sebelum disimpan.

Vena sayap, walaupun berubah-ubah dalam keluarga, mempunyai beberapa ciri umum yang dapat diringkaskan pada asasnya dalam morfologi cabang sektor radial dan pengurangan pemalsuan media. Costa tersebar di seluruh margin dan subkosta panjang, selalunya berakhir pada separuh jarak marginal. Jejari hampir selalu dibahagikan kepada empat cawangan, dengan gabungan cabang R 2 dan R 3, dan dicirikan oleh kesinduan bahagian hujung cawangan sektor jejari. Venasi menunjukkan penyederhanaan yang ketara berbanding dengan Asiloidea lain dan, secara umum, dengan Brachycera bawah yang lain. M 1 selalu ada dan menyatu pada margin atau, kadang-kadang, R 5. M 2 hadir dan mencapai margin, atau tidak hadir. M 3 sentiasa tiada dan bercantum dengan M 4. Sel diskal selalunya ada. Cabang M 3 +4 dipisahkan dari sel discal di distal posterior vertex, sehingga mid-cubital menghubungkan terus ke margin posterior sel discal. Urat kubital dan dubur lengkap dan berakhir secara berasingan di pinggir atau bergabung bergabung untuk jarak pendek Akibatnya, cawan sel mungkin terbuka atau tertutup.

Jenis sayap sayap 1 Bombylius

Jenis sayap sayap 2 Anthrax

Jenis sayap sayap 3 Usiinae

Burung layang-layang keluarga Syrphidae sering meniru Hymenoptera juga, dan beberapa spesies syrphid sukar dibedakan daripada Bombyliidae pada pandangan pertama, terutama untuk spesies lalat lebah yang tidak mempunyai proboscis panjang atau kaki nipis yang panjang. Bombyliid tersebut masih boleh dibezakan di lapangan dengan ciri-ciri anatomi seperti:

- Mereka biasanya mempunyai muka yang sekata melengkung atau condong (lalat terbang selalunya mempunyai bonjolan yang menonjol pada kutikula muka dan/atau unjuran muka seperti paruh ke tombol).

- Sayap tidak mempunyai "tepi belakang palsu" dan selalunya mempunyai kawasan gelap yang besar dengan sempadan yang tajam, atau corak bintik-bintik yang kompleks (sayap hoverfly selalunya jelas atau mempunyai kecerunan warna yang licin, dan uratnya bergabung ke belakang menjadi "tepi palsu" sebaliknya daripada mencapai tepi belakang sebenar sayap).

- Perut dan toraks hampir tidak mempunyai kawasan berkilat besar yang terbentuk oleh kutikula yang terdedah (hoverflies sering mempunyai permukaan badan kutikula yang berkilat).

Suntingan Larva

Larva kebanyakan lalat lebah terdiri daripada dua jenis. Jenis pertama adalah memanjang dan berbentuk silinder dan mempunyai sistem trakea metapneustic atau amphipneustic, disediakan dengan sepasang spirakel perut dan, mungkin, sepasang toraks. Jenis kedua adalah degil dan eucephalic dan mempunyai sepasang spiral yang diletakkan di perut.

Orang dewasa menyukai kawasan yang cerah dan kering, sering berpasir atau berbatu. Mereka mempunyai sayap yang kuat dan biasanya dijumpai semasa terbang di atas bunga atau berehat di tanah kosong yang terdedah kepada matahari (menonton video) Mereka secara signifikan menyumbang kepada penyebaran silang tanaman, menjadi penyerbuk utama beberapa spesies tumbuhan di kawasan padang pasir. Tidak seperti kebanyakan dipteran glisifagus, lalat lebah memakan serbuk sari (dari mana mereka memenuhi keperluan protein mereka). Tingkah laku trofik yang serupa berlaku di kalangan hoverflies, satu lagi keluarga penting pendebunga Diptera.

Seperti hoverflies, lalat lebah mampu melakukan percepatan atau perlambatan secara tiba-tiba, semua kecuali perubahan arah berkelajuan tinggi tanpa momentum, kawalan kedudukan yang luar biasa ketika melayang di udara, serta pendekatan yang berhati-hati terhadap kemungkinan memberi makan atau mendarat tapak. Bombyliids sering dikenali dengan bentuknya yang kaku, oleh tingkah lakunya yang melayang, dan untuk panjang bahagian mulut dan / atau kaki mereka ketika mereka bersandar ke bunga. Tidak seperti hoverflies, yang menetap di atas bunga seperti lebah dan serangga pendebungaan lain, spesies lalat lebah yang mempunyai proboscis panjang biasanya makan sambil terus melayang di udara, bukan seperti Sphingidae, atau semasa menyentuh bunga dengan kaki depan mereka untuk menstabilkan kedudukan mereka - tanpa mendarat atau menghentikan ayunan sayap sepenuhnya.

Walau bagaimanapun, spesies dengan probosik yang lebih pendek mendarat dan berjalan di atas kepala bunga, dan jauh lebih sukar untuk dibezakan dengan burung layang-layang di ladang. Seperti yang dinyatakan, banyak spesies lalat lebah menghabiskan selang masa yang tetap untuk berehat di atas atau berhampiran tanah, manakala lalat hover jarang melakukannya. Oleh itu, boleh menjadi maklumat untuk memerhatikan individu makan dan melihat sama ada mereka bergerak ke permukaan tanah setelah beberapa minit. Pemerhatian yang dekat selalunya lebih mudah dengan memberi makan kepada individu berbanding dengan lalat di atas tanah, kerana yang terakhir adalah sangat cepat untuk terbang pada pandangan pertama siluet bergerak atau menghampiri bayang-bayang.

Tingkah laku mengawan hanya diperhatikan dalam segelintir spesies. Ini boleh berbeza-beza dari penyerangan udara yang cukup umum atau pemintasan udara yang tidak diminta, seperti biasa di banyak Diptera, hingga tingkah laku pacaran yang melibatkan corak penerbangan khusus konteks dan nada denyut sayap lelaki, dengan atau tanpa kontak proboscis berulang antara lelaki dan wanita. [5] Jantan sering mencari kawasan lapang yang lebih kecil atau lebih besar di atas tanah, mungkin di sekitar tumbuhan berbunga atau habitat sarang perumah yang mungkin menarik bagi betina. Mereka dapat kembali ke tempat yang mereka pilih setelah setiap kali makan atau setelah mengejar serangga lain yang terbang, atau mereka dapat memeriksa wilayah yang mereka pilih sambil melayang satu atau lebih meter di atas tambalan telanjang.

Betina betina mencari habitat bersarang dari tuan rumah, dan dapat menghabiskan banyak waktu memeriksa misalnya pintu masuk liang yang lebih kecil di tanah. Dalam beberapa spesies, tingkah laku ini terdiri daripada sentuhan tanah depan yang berlegar-legar dan berulang-ulang di dekat pinggir pintu masuk liang, mungkin untuk mengesan petunjuk biokimia mengenai pembina liang seperti identiti, kebiasaan berkunjung dan lain-lain. Sekiranya liang melewati pemeriksaan maka lalat lebah boleh terus mendarat dan memasukkan perutnya yang posterior ke dalam tanah, bertelur satu atau lebih telur di pinggir atau di dekatnya. Dalam sembilan subkeluarga termasuk Bombyliinae dan Anthracinae yang lebih sering diperhatikan, betina sering tidak mendarat sama sekali semasa pemeriksaan liang inang, dan akan melepaskan telur mereka dari udara dengan gerakan pantas perut sambil melayang di pintu masuk liang.

Tingkah laku luar biasa ini telah menjadikan spesies tersebut sebagai nama biasa Pengebom terbang, ia boleh dilihat dalam klip video dalam talian Roy Kleuker di YouTube. [6] Lalat betina dengan strategi oviposisi yang luar biasa ini biasanya mempunyai struktur penyimpanan ventral yang dikenali sebagai ruang pasir di hujung perut bahagian belakang, yang dipenuhi dengan biji-bijian pasir yang dikumpulkan sebelum bertelur. [7] [8] Butiran pasir ini digunakan untuk menyalut setiap telur sejurus sebelum pelepasan udara, yang diandaikan dapat meningkatkan matlamat betina serta peluang kemandirian telur dengan menambah berat, memperlahankan dehidrasi telur, menutup isyarat biokimia yang boleh mencetuskan tingkah laku inang seperti pembersihan atau peninggalan sarang - atau gabungan ketiga-tiganya.

Walaupun bilangan spesies keluarga ini tinggi, biologi juvana kebanyakan spesies kurang difahami. Perkembangan postembrionik adalah dari jenis hipermetamorfik, dengan larva parasitoid atau hiperparasitoid. Pengecualian adalah larva Heterotropinae, yang biologinya serupa dengan larva Asiloidea lain, dengan larva pemangsa yang tidak mengalami hipermetamorfosis. Hos lalat lebah tergolong dalam susunan serangga yang berbeza, tetapi kebanyakannya adalah antara pesanan holometabolous. Antaranya ialah Hymenoptera, khususnya superfamili Vespoidea dan Apoidea, kumbang, lalat lain, dan rama-rama. Larva beberapa spesies termasuk Vila sp. memakan ovum Orthoptera. Bombylius utama larva adalah parasit pada lebah bersendirian termasuk Andrena. Antraks dubur adalah parasit larva kumbang harimau, dan A. trifasciata adalah parasit lebah dinding. Beberapa spesies Afrika Vila dan Thyridanthrax adalah parasit pupae dari tsetse lalat. Villa morio adalah parasit pada spesies ichneumonid yang berfaedah Banchus femoralis. Larva daripada Dipalta bersifat parasit pada antlion. [9]

Tingkah laku bentuk yang diketahui serupa dengan larva Nemestrinoidea: larva instar pertama adalah planidium sementara tahap lain mempunyai habitus parasit. Telur biasanya diletakkan di inang masa depan atau di sarang tempat inang berkembang. Planidium memasuki sarang dan mengalami perubahan sebelum mula memberi makan.

Keluarga ini berada di seluruh dunia (wilayah Palearctic, ranah Nearctic, alam Afrotropik, wilayah Neotropik, wilayah Australasia, wilayah Oceanian, wilayah Indomalayan), tetapi mempunyai keanekaragaman hayati yang paling besar dalam iklim kering dan subtropika. Di Eropah, 335 spesies diedarkan di antara 53 genera.


Sambungan Koperasi: Perosak Serangga, Kutu dan Penyakit Tumbuhan

Kluster Terbang

Lalat kluster menyerupai lalat rumah, tetapi biasanya lebih besar dan mempunyai rambut kekuningan di bahagian dada. Mungkin ada empat atau lebih generasi lalat kluster setiap musim.

Serangga ini adalah parasit cacing tanah. Semakin banyak cacing tanah, semakin berkemungkinan lalat kluster akan berlimpah dan menjadi gangguan. Cacing tanah paling banyak terdapat di sekitar ladang lama dan tempat di mana kotoran telah ditumpuk atau disimpan. Populasi cacing tanah yang tinggi adalah biasa di kawasan berumput, tanah yang baik dan di mana kelembapan mencukupi.

Pada akhir musim panas, orang dewasa mencari laman yang dilindungi musim sejuk seperti loteng, loteng, lompang dinding, kulit kayu yang longgar, lubang di pokok, atau celah dan rongga lain. Berdasarkan pemerhatian biasa, lalat gugus nampaknya tertarik pada bangunan berwarna terang. Sekiranya bahagian tepi bangunan itu ketat, maka lalat mempunyai peluang yang kurang untuk masuk ke dalam struktur.

Pada hari-hari yang hangat pada awal musim sejuk, atau ketika pemilik rumah menghidupkan panas dalaman, lalat menjadi aktif dan bergerak menuju kehangatan. Rupa-rupanya ini berlaku hanya setelah mereka terdedah pada tempoh suhu yang lebih sejuk. Lalat boleh menjadi gangguan pada pertengahan musim sejuk, serta musim bunga dan musim gugur, apabila kehangatan atau cahaya menarik mereka dari tempat persembunyiannya ke bilik lain di rumah. Semasa musim panas, lalat berkelompok tidak disedari kerana mereka mencari tuan rumah mereka, cacing tanah.

Pengurusan

Cara terbaik untuk mengawal lalat kelompok di dalam rumah ialah "membinanya". Memaku kayu di atas retakan atau mendakapnya dengan kuat membantu mengurangkan penumpukan perosak tahunan. Meletakkan penyaringan pada bolong soffit loteng ialah satu lagi langkah yang boleh anda ambil. Anda juga boleh menggunakan tarikan lalat untuk menyala untuk menghilangkan loteng anda daripada makhluk itu. Hanya buka tingkap loteng pada hari yang cerah. Penggunaan pembersih vakum adalah cara yang cepat dan berkesan untuk mengurangkan populasi lalat berkelompok di rumah. Perangkap, seperti & # 8220Cluster Buster & # 8221, mungkin berkesan apabila digunakan di dalam rumah.

Semburan aerosol yang mengandungi resmetrin atau piretrin tersedia untuk digunakan di rumah. Jalur serangga atau jalur tanpa hama yang mengandungi Vapona juga bermanfaat. Pastikan anda mengikuti arahan label dan berhati-hati. Gunakan jalur di loteng, bingkai tingkap, ruang di sekitar kusen, di bawah atap dan persimpangan dinding. Kawasan rehat di luar boleh disembur dengan permetrin pada pertengahan hingga akhir Ogos. Cari bahan ini pada senarai bahan aktif pada label produk. Ketahuilah bahawa sebilangan formulasi semburan mungkin tidak berpihak. Banyak orang mengupah khidmat syarikat kawalan perosak profesional untuk menerapkan penghadang bahan kimia di bahagian luar kediaman mereka untuk mengelakkan kemasukan kluster terbang ke rumah.

Dari sudut positifnya, lalat kluster tidak menggigit orang atau haiwan, tidak tertarik dengan sampah, dan ini merupakan petunjuk yang baik untuk bekalan cacing tanah yang tidak terlalu jauh!

Semasa Menggunakan Racun Makhluk Perosak

SENTIASA IKUTI ARAH LABEL!

Unit Pengurusan Perosak
Makmal Diagnostik dan Penyelidikan Sambungan Koperasi
17 Godfrey Drive, Orono, ME 04473
1.800.287.0279 (di Maine)

Maklumat dalam penerbitan ini disediakan semata-mata untuk tujuan pendidikan. Tiada tanggungjawab diambil kira untuk sebarang masalah yang berkaitan dengan penggunaan produk atau perkhidmatan yang dinyatakan. Tidak ada sokongan untuk produk atau syarikat yang dimaksudkan, dan juga kritikan terhadap produk atau syarikat yang tidak disebutkan namanya.

Hubungi 800.287.0274 (di Maine), atau 207.581.3188, untuk mendapatkan maklumat tentang penerbitan dan tawaran program daripada Sambungan Koperasi Universiti Maine, atau lawati extension.umaine.edu.

Universiti Maine ialah majikan EEO/AA, dan tidak mendiskriminasi atas alasan bangsa, warna kulit, agama, jantina, orientasi seksual, status transgender, ekspresi jantina, asal negara, status kewarganegaraan, umur, kecacatan, maklumat genetik atau veteran. status dalam pekerjaan, pendidikan, dan semua program dan aktiviti lain. Orang berikut telah ditunjuk untuk mengendalikan pertanyaan mengenai polisi bukan diskriminasi: Sarah E. Harebo, Pengarah Kesempatan yang Sama, Dewan North Stevens 101, University of Maine, Orono, ME 04469-5754, 207.581.1226, TTY 711 (Maine Relay Sistem).


Apa jenis lalat ini? - Biologi

Tanduk terbang, Haematobia irritans irritans (Linnaeus), adalah salah satu perosak lembu yang paling penting dari segi ekonomi di seluruh dunia. Ia adalah ektoparasit penyusuan darah yang wajib, memakan hampir secara eksklusif pada lembu. Hanya di Amerika Syarikat, kerugian ratusan juta dolar disebabkan oleh terbang tanduk setiap tahun, sementara jutaan tambahan dibelanjakan setiap tahun untuk racun serangga untuk mengurangkan bilangan lalat tanduk (Kunz et al. 1991, Byford et al. 1992, Cupp et al. 1992). 1998).

Rajah 1. Pandangan punggung lalat tanduk dewasa, Haematobia iritan iransans (Linnaeus). Gambar oleh Dan Fitzpatrick, University of Florida.

Sinonim (Kembali ke Atas)

Mengatasi orang iritan Linnaeus, 1758
Haematobia cornicola Williston, 1889
Haematobia serrata Robineau-Desvoidy, 1830
Lyperosia meridionalis Bezzi, 1911
Lyperosia rufifron Bezzi, 1911

Pengedaran (Kembali ke Atas)

Lalat tanduk telah diperkenalkan ke Amerika Utara dari Perancis pada tahun 1887 (Bruce 1938). Perosak ini kini dijumpai di seluruh benua Amerika, begitu juga di Eropah, Asia, dan kawasan bukan tropika di Afrika.

Penerangan (Kembali ke Atas)

Dewasa: Lalat tanduk dewasa mempunyai badan berwarna kelabu kecoklatan atau hitam dan berkilat, dengan sayap yang sedikit bertindih yang dipegang rata di atas perut. Panjang badannya 3,5 hingga 5 mm, atau kira-kira separuh ukuran lalat rumah biasa, Musca domestica Linnaeus. Kepalanya mempunyai antena merah kecoklatan kecil yang menghala ke bawah. Toraks mempunyai dua jalur selari pada permukaan dorsal, tepat di belakang kepala. Kedua-dua lalat tanduk jantan dan betina mempunyai bahagian mulut yang menusuk dan memakan darah secara eksklusif.

Gambar 2. Pandangan sisi lalat tanduk dewasa, Haematobia iritan iransans (Linnaeus). Gambar oleh Dan Fitzpatrick, University of Florida.

Lalat tanduk berbeza dengan hama ternak utama yang lain, lalat yang stabil (Stomoxys calcitrans (Linnaeus)), dalam beberapa cara. Walaupun kedua lalat mempunyai proboscis yang menusuk, lalat tanduk mempunyai palpi rahang atas yang lebih panjang berbanding dengan proboscis. Lalat tanduk juga lebih kecil (panjang 5 mm), dan tidak mempunyai corak utama pada bahagian dorsal (belakang) perutnya, manakala lalat stabil berukuran 7 hingga 8 mm panjang dan mempunyai rupa "checkerboard" pada bahagian atas perut. Lalat tanduk juga harus bertelur dalam kotoran segar yang tidak terganggu, sedangkan lalat yang stabil jarang bertelur di pupuk kandang segar, lebih memilih campuran campuran jerami kotoran, makanan dan jerami yang direndam dalam air kencing, tempat sampah makan, timbunan rumput, dan pemberian rumput kering bulat laman web.

Rajah 3. Pandangan sisi lalat tanduk, Haematobia irritans irritans (Linnaeus) (atas) dan lalat stabil, Stomoxys calcitrans (Linnaeus) (bawah). Palpi maksila lalat tanduk hampir sepanjang belalainya, manakala palpi lalat yang stabil jauh lebih pendek daripada belalainya. Gambar oleh Dan Fitzpatrick (lalat tanduk), Jerry Butler (lalat stabil), Universiti Florida.

Telur: Telur lalat tanduk berwarna sawo matang, kuning atau putih apabila pertama kali diletakkan, dan kemudian menjadi gelap kepada warna coklat kemerahan sebelum menetas. Telur adalah bujur dan cekung pada satu sisi dan cembung di sebelah yang lain, dan panjangnya lebih kurang 1.2 mm.

Gambar 4. Telur (bawah) dan larva instar ketiga (kepala atas kiri) seekor tanduk terbang, Haematobia iritan iransans (Linnaeus). Gambar oleh Dan Fitzpatrick, University of Florida.

Larva: Ulat yang baru menetas berwarna putih dan panjang kira-kira 1.5 mm dengan kepala runcing yang langsing. Spiracle, atau bukaan untuk bernafas, muncul sebagai lekukan hitam di hujung perut.

Rajah 5. Plat spirakular larva instar ketiga (atas) dan pupa (bawah) tanduk terbang, Haematobia irritans irritans (Linnaeus). Gambar oleh Dan Fitzpatrick, University of Florida.

Pupa: Pula panjang 3 hingga 4 mm dan putih pada mulanya, pupus luar yang menutupi sklerotisasi, atau mengeras, berubah menjadi coklat kemerahan gelap selama beberapa jam.

Rajah 6. Kes pupa kosong lalat tanduk, Haematobia irritans irritans (Linnaeus). Lihat lubang kemunculan orang dewasa di kiri atas. Gambar oleh Dan Fitzpatrick, University of Florida.

Kitaran Hidup (Kembali ke Atas)

Kotoran lembu adalah habitat yang diperlukan untuk pengembangan larva, dan orang dewasa pada dasarnya memakan ternak, dengan betina meninggalkan inangnya hanya cukup lama untuk bertelur dalam kotoran segar. Telur menetas antara satu hingga dua hari selepas bertelur (Foil dan Hogsette 1994). Memakan najis segar, larva berkembang melalui tiga instar dalam empat hingga lapan hari sebelum mencapai saiz matang 6.5 hingga 7.5 mm (Lysyk 1991, 1992). Pupation biasanya memerlukan enam hingga lapan hari untuk pematangan penuh (Foil dan Hogsette 1994). Masa yang diperlukan untuk menyelesaikan kitaran hidup lalat tanduk adalah antara 10 dan 20 hari, bergantung pada suhu dan waktu tahun (Campbell 2006).

Apabila orang dewasa muncul dari kes anak anjing, diperlukan lebih kurang tiga hari untuk menyelesaikan pematangan organ pembiakan yang memungkinkan pengeluaran telur. Lalat dewasa mula mengawan tiga hingga lima hari setelah kemunculan, dan betina dewasa mula bertelur tiga hingga lapan hari setelah kemunculannya. Seekor burung betina terbang oviposit, atau meletakkan, rata-rata 78 telur selama umur dewasa sekitar enam hingga tujuh hari, tetapi boleh bertelur hingga 100-200 telur (Krafsur dan Ernst 1986). Lalat tanduk jantan dan betina hanya memakan darah selama peringkat dewasa, sedangkan lalat pemberi darah lain, seperti lalat stabil, akan memakan nektar.

Walaupun lalat tanduk lazimnya diapause, atau hibernate, sebagai pupa sepanjang musim sejuk di kebanyakan kawasan subtropika dan sederhana (Mendes dan Linhares 1999), populasi lalat tanduk adalah gangguan sepanjang tahun kepada lembu di tenggara Amerika Syarikat, dengan populasi yang lebih rendah di musim sejuk (Koehler et al. 2005). Populasi lalat memuncak pada awal musim panas, kemudian menurun apabila cuaca menjadi panas dan kering. Pada musim luruh, populasi biasanya meningkat semula apabila suhu menurun dan hujan meningkat, jatuh sekali lagi selepas September atau Oktober, apabila suhu lewat musim luruh dan awal musim sejuk ditetapkan (Baldwin et al. 2005).

Hos (Kembali ke Atas)

Lalat tanduk menerima nama ini kerana kebiasaan mereka berkerumun di sekitar tanduk lembu, walaupun mereka biasanya lebih suka menetap di bahagian belakang lembu pada waktu yang lebih sejuk pada siang hari dan di perut pada waktu yang lebih panas. Mereka diketahui memakan kuda, anjing, babi dan kadang-kadang manusia. Walau bagaimanapun, mereka mempunyai kaitan rapat dengan ternak dan biasanya tinggal di atau berhampiran lembu sepanjang kitaran hidup mereka.

Kepentingan Ekonomi (Kembali ke Atas)

Lalat tanduk dianggap sebagai salah satu perosak yang paling memusnahkan ekonomi industri lembu pedaging di Amerika Syarikat (Byford et al. 1992). Ia menyebabkan kerugian tahunan antara AS $ 700 juta hingga $ 1 bilion, sementara tambahan AS $ 60 juta dibelanjakan setiap tahun untuk racun serangga untuk mengawal jangkitan (Kunz et al. 1991, Byford et al. 1992, Cupp et al. 1998).

Oleh kerana tingkah laku memberi makan lalat tanduk dan bilangan lalat yang banyak terdapat pada haiwan, lembu menggunakan tahap tenaga yang besar dalam tingkah laku bertahan. Ini mengakibatkan peningkatan kadar jantung dan pernafasan, pengurangan waktu penggembalaan, penurunan kecekapan makan dan penurunan pengeluaran susu pada sapi, yang dapat mengakibatkan penurunan berat badan penyapihan (Byford et al. 1992). Pemakanan tanduk yang meluas juga dapat merosakkan kulit sapi ternak dengan teruk, yang mengakibatkan kulit berkualiti rendah (Pruett et al. 2003).

Lalat tanduk biasanya dilaporkan pada lembu pedaging dalam jumlah yang banyak, dengan beribu-ribu lalat berlaku pada haiwan individu. Walaupun purata saiz hidangan hanya 1.5 mg, atau 10 µL, darah setiap penyusuan (Kuramochi dan Nishijima 1980), setiap lalat mengambil antara 24 hingga 38 hidangan darah setiap hari (Foil dan Hogsette 1994). Oleh itu, jumlah lalat yang menyerang seekor binatang, serta jumlah makanan darah yang diambil setiap hari oleh setiap lalat, dapat mengakibatkan kehilangan darah yang besar (Harris et al. 1974).

Rajah 7. Awan tanduk terbang (bintik putih yang banyak), Haematobia iritan iransans (Linnaeus), memakan lembu. Gambar oleh Lane Foil, Universiti Negeri Louisiana.

Lalat tanduk juga merupakan vektor beberapa patogen. Nematod filaria, Stephanofilaria stilesi Chitwood, menyebabkan stephanofilariasis, dermatitis yang dicirikan oleh kawasan kulit berkerak di bahagian bawah lembu. Biasanya ditemui pada lembu di barat dan barat daya Amerika Syarikat dan Kanada, S. stili boleh mempengaruhi sehingga 80 hingga 90% kawanan (Hibler 1966). Walau bagaimanapun, kerugian pengeluaran yang berkaitan dengan nematoda ini atau tindak balas buruk lain pada lembu belum dilaporkan.

Lalat tanduk juga dapat vektor beberapa Staphylococcus spp. bakteria, yang menyebabkan mastitis, atau jangkitan puting pada lembu tenusu, terutamanya pada bulan-bulan musim panas (Owens et al. 1998, Gillespie et al. 1999). Sebagai tambahan kepada kerosakan puting yang disebabkannya, memberi makan lalat boleh memasukkan bakteria ke dalam luka terbuka, menyebabkan jangkitan yang ketara (Edwards et al. 2000). Pengeluar lembu dapat mengurangkan kes mastitis dengan menguruskan bilangan lalat tanduk (Nickerson et al. 1995, Edwards et al. 2000).

Pengurusan (Kembali ke Atas)

Ambang batas statik telah ditetapkan, berdasarkan jumlah lalat tanduk per binatang, untuk menentukan apakah pelaksanaan pengelolaan lalat diperlukan secara ekonomi. Anak lembu dan lembu tenusu tidak dapat bertahan dalam jumlah lalat yang tinggi tanpa mengalami kerosakan yang dapat diukur 50+ lalat setiap lembu tenusu yang disusu dianggap penting bagi ekonomi. Lembu daging boleh bertolak ansur sehingga 200 lalat setiap haiwan, manakala lembu jantan boleh bertolak ansur dengan bilangan lalat tanduk yang paling banyak (Schreiber et al. 1987, Hogsette et al. 1991).

Kawalan kimia: Tanda telinga yang diresapi oleh racun serangga menjadi kaedah yang popular dan berkesan untuk menguruskan populasi tanduk, kerana munculnya racun perosak pyrethroid dan organofosfat dengan kos rendah (Szalanski et al. 1991). Dalam kumpulan yang terjejas oleh lalat tanduk, lembu betina dengan tag telinga mendapat sehingga 50% lebih berat setiap hari berbanding lembu betina yang tidak dikawal (Sanson et al. 2003). Baru-baru ini, racun serangga yang diformulasikan ke dalam limpahan semakin banyak digunakan. Walaupun teknologi insektisida sebagian besar, jika tidak secara eksklusif, diandalkan untuk menguruskan lalat tanduk, penentangan terhadap banyak racun serangga telah banyak dilaporkan dan terbukti berlaku melalui beberapa mekanisme yang diketahui, termasuk ketidaksensitifan lokasi sasaran dan detoksifikasi metabolisme menyeluruh terhadap racun serangga (Szalanski et. al. 1991). Oleh itu, penggunaan pendekatan pengurusan perosak bersepadu yang menggunakan beberapa kaedah secara bersamaan, akan membolehkan pengeluar lembu mengurangkan populasi lalat tanduk dewasa dan larva dengan lebih berkesan. Putaran bahan kimia dengan bahan aktif yang berbeza dan teknik aplikasi yang berbeza dianggap sebagai pendekatan terbaik untuk menguruskan lalat ini.

Penggunaan getah belakang dan beg habuk, yang secara fizikal menyapu racun serangga kepada lembu apabila mereka menyerangnya, boleh membantu usaha kawalan apabila ia diletakkan di lokasi di mana lembu terpaksa menyikatnya. Apabila racun serangga disapu semula pada getah belakang dan pepijat habuk setiap dua hingga tiga minggu, ia adalah munasabah berkesan untuk menguruskan lalat tanduk (Baldwin et al. 2005).

Aplikasi suapan, di mana racun perosak tertentu dicampurkan ke dalam makanan lembu, mengakibatkan bahan kimia melalui saluran penghadaman lembu dan seterusnya ke dalam baja. Endektosida juga telah mendapat populariti dengan para penternak lembu dalam beberapa tahun kebelakangan ini dengan pelbagai nama dagang. Racun perosak ini disuntik atau digunakan secara topikal dan diserap oleh lembu dan dikumuhkan tanpa diubah dalam baja. The pesticide remains in the dung and can significantly reduce immature horn fly numbers for up to two months after application (Miller et al. 1981, Lysyk and Colwell 1996, Floate et al. 2001). Another approach to this technique, the bolus, provides several weeks worth of control from a single treatment. Boluses are essentially long-lasting pills that are deposited into the animal's stomach, where they slowly release the insecticide into the manure. Both of these techniques kill only the immature stages of the horn fly and do not affect the adult flies feeding on the animals. Therefore, because the adult flies are not killed, and because new adult flies may emigrate from nearby untreated herds, feed-throughs are not considered cure-all treatments (Baldwin et al. 2005).

Biological insecticides also have gained popularity as alternatives to pyrethroid or organophosphate pesticides. Bacillus thurigiensis Berliner (Bt), a well-known bacterium used as a biological insecticide, is effective against a range of insect pests. Although there are no products for horn fly control on the market containing Bt, recent research has indicated that several strains of Bt are highly toxic to horn fly larvae (Lysyk et al. 2010).

Mechanical control: An old, and perhaps effective, non-chemical control tactic that has been critically evaluated in recent years is the walk-through horn fly trap. These traps utilize the horn fly's reluctance to enter a darkened building to remove the flies from the animals and then trap or kill the flies with sticky traps or electrocution as they leave the animals. More modern designs of this technique are reported to provide up to an 85% reduction of fly numbers (Watson et al. 2002).

Gambar 8. Cow using walkthrough fly trap to remove horn flies, Haematobia irritans irritans (Linnaeus). Photograph by Phillip Kaufman, University of Florida.

Kawalan biologi: A number of natural predators, parasitoids and competitors have been examined as agents for suppression of horn fly numbers. Dung beetles of the family Scarabaeidae, as well as other predaceous beetles of the families Staphylinidae and Histeridae, are important natural predators of larval horn flies in the manure (Hu and Frank 1996, Oyarzún et al. 2008). Interestingly, the red imported fire ant, Solenopsis invicta Buren, also reduces immature horn fly numbers in cattle dung pats as well through predator activity (Summerlin et al. 1984), but may cause additional problems by killing the other predators and by stinging the cattle, particularly calves (Hu and Frank 1996).

Gambar 9. Onthophagous gazella Fabricius, a common scarab beetle in Florida, on a cattle dung pat. This and other dung beetles bury large portions of the manure and accelerate manure drying, creating competition for the larvae of the horn fly, Haematobia irritans irritans (Linnaeus), that live in the pat. Photograph by Phillip Kaufman, University of Florida.

Parasitoid wasps of the families Pteromalidae and Chalcididae, which are not pests of people but naturally attack horn flies, have been assessed as potential control agents for use against horn flies in the United States (Geden et al. 2006). These wasps, including Spalangia dan Muscidifurax spp., lay their eggs in fly pupae, and the wasps' offspring feed internally on the fly and eventually kill it. To date, horn fly control has not been accomplished solely using naturally-occurring or augmentative biological control, principally due to the widely distributed cattle dung pats (and therefore horn fly pupae) and difficulty in getting released wasps to these sites. Cattle producers are encouraged to protect these natural enemies of the horn fly, as without them, populations would assuredly be much higher.

Gambar 10. Spalangia sp. wasp parasite probing on a fly puparia. A female stings a pupa, lays a single egg, and the wasp larva feeds on and kills the pupating fly. Gambar oleh Jerry Butler, Universiti Florida.

Rujukan Terpilih (Kembali ke Atas)

  • Baldwin JL, Foil LD, Hogsette JA. (May 2005). Important fly pests of Louisiana beef cattle. LSUAgCenter. (14 April 2020)
  • Bruce WG. 1938. A practical trap for the control of horn flies on cattle. Journal of the Kansas Entomological Society 11: 88-93.
  • Byford RL, Craig ME, Crosby BL. 1992. A review of ectoparasites and their effect on cattle production. Journal of Animal Science 70: 597-602.
  • Campbell JB. 1993. Horn fly control on cattle. University of Nebraska-Lincoln Extension Publication. (14 April 2020)
  • Cupp EW, Cupp MS, Ribeiro JMC, Kunz SE. 1998. Bloodfeeding strategy of Haematobia irritans (Diptera: Muscidae). Journal of Medical Entomology 35: 591-595.
  • Edwards JF, Wikse SE, Field RW, Hoelscher CC, Herd DB. 2000. Bovine teat atresia associated with horn fly (Haematobia irritans irritans (L))-induced dermatitis, Veterinary Pathology 37: 360-364.
  • Floate KD, Spooner RW, Colwell DD. 2001. Larvicidal activity of endectocides against pest flies in the dung of treated cattle. Medical and Veterinary Entomology 15: 117-120.
  • Foil LD, Hogsette JA. 1994. Biology and control of tabanids, stable flies and horn flies. Revue Scientifique et Technique 13: 1125-1158.
  • Geden CJ, Moon RD, Butler JF. 2006. Host ranges of six solitary filth fly parasitoids (Hymenoptera: Pteromalidae, Chalcididae) from Florida, Eurasia, Morocco, and Brazil. Environmental Entomology 35: 405-412.
  • Gillespie BE, Owens WE, Nickerson SC, Oliver SP. 1999. Deoxyribonucleic acid fingerprinting of Staphylococcus aureus from heifer mammary secretions and from horn flies. Journal of Dairy Science 82: 1581-1585.
  • Harris RL, Miller JA, Frazar ED. 1974. Horn flies and stable flies: feeding activity. Annals of the Entomological Society of America 67: 891-894.
  • Haufe WO. 1982. Growth of range cattle protected from horn flies Haematobia irritans by ear tags impregnated with fenvalerate. Canadian Journal of Animal Science 62: 567-573.
  • Hibler CP. 1966. Development of Stephanofilaria stilesi in horn fly. Journal of Parasitology 52: 890-898.
  • Hogsette JA, Prichard DL, Ruff JP. 1991. Economic effects of horn fly (Diptera: Muscidae) populations on beef cattle exposed to three pesticide treatment regimes. Journal of Economic Entomology 84: 1270-1274.
  • Hu GY, Frank JH. 1996. Effect of the red imported fire ant (Hymenoptera: Formicidae) on dung-inhabiting arthropods in Florida. Environmental Entomology 25: 1290-1296.
  • Kerlin RL, Allingham PG. 1992. Acquired immune response of cattle exposed to buffalo fly (Haematobia irritans exigua). Veterinary Parasitology 43: 115-129.
  • Koehler, PG, Butler JF, Kaufman PE. (December 2005). Horn flies. EDIS. (no longer available online).
  • Krafsur ES, Ernst CM. 1986. Phenology of horn fly populations (Diptera: Muscidae) in Iowa, USA. Journal of Medical Entomology 23: 188-195.
  • Kuramochi K, Nishijima Y. 1980. Measurement of the meal size of the horn fly, Haematobia irritans (L.) (Diptera: Muscidae), by the use of amaranth. Applied Entomological Zoology 15: 262-269.
  • Lysyk TJ. 1991. Use of life-history parameters to improve a rearing method for horn fly, Haematobia irritans irritans (L) (Diptera, Muscidae), on bovine hosts. Canadian Entomologist 123: 1199-1207.
  • Lysyk TJ. 1992. Effect of larval rearing temperature and maternal photoperiod on diapause in the horn fly (Diptera, Muscidae). Environmental Entomology 21: 1134-1138.
  • Lysyk TJ, Colwell DD. 1996. Duration of efficacy of diazinon ear tags and ivermectin pour-on for control of horn fly (Diptera: Muscidae). Journal of Economic Entomology 89: 1513-1520.
  • Lysyk TJ, Kalischuk-Tymensen LD, Rochon K, Selinger LB. 2010. Activity of Bacillus thuringiensis isolates against immature horn fly and stable fly (Diptera: Muscidae). Journal of Economic Entomology 103: 1019-1029.
  • Mendes J, Linhares AX. 1999. Diapause, pupation sites and parasitism of the horn fly, Haematobia irritans, in south-eastern Brazil. Medical and Veterinary Entomology 13: 180-185.
  • Miller JA, Kunz SE, Oehler DD, Miller RW. 1981. Larvicidal activity of Merck MK-933, an avermectin, against the horn fly, stable fly, face fly, and house fly. Journal of Economic Entomology 74: 608-611.
  • Nickerson SC, Owens WE, Boddie RL. 1995. Mastitis in dairy heifers - initial studies on prevalence and control, Journal of Dairy Science 78: 1607-1618.
  • Owens WE, Oliver SP, Gillespie BE, Ray CH, Nickerson SC. 1998. Role of horn flies (Haematobia irritansdalam Staphylococcus aureus-induced mastitis in dairy heifers. American Journal of Veterinary Research 59: 1122-1124.
  • Oyarzún, MP, Quiroz A, Birkett MA. 2008. Insecticide resistance in the horn fly: alternative control strategies. Medical and Veterinary Entomology 22: 188-202.
  • Pruett JH, Steelman CD, Miller JA, Pound JM, George JE. 2003. Distribution of horn flies on individual cows as a percentage of the total horn fly population. Veterinary Parasitology 116: 251-258.
  • Sanson DW, DeRosa AA, Oremus GR, Foil LD. 2003. Effect of horn fly and internal parasite control on growth of beef heifers. Veterinary Parasitology 117: 291-300.
  • Schreiber ET, Campbell JB, Kunz SE, Clanton DC, Hudson DB. 1987. Effects of horn fly (Diptera: Muscidae) control on cows and gastrointestinal worm (Nematode: Trichostrongylidae) treatment for calves on cow and calf weight gains. Journal of Economic Entomology 80: 451-454.
  • Summerlin JW, Petersen HD, Harris RL. 1984. Red imported fire ant (Hymenoptera: Formicidae): effects on the horn fly (Diptera: Muscidae) and coprophagous scarabs. Environmental Entomology 13: 1405-1410.
  • Szalanski, AL, Black WC, Broce AB. 1991. Esterase staining activity in pyrethroid-resistant horn flies (Diptera: Muscidae). Journal of the Kansas Entomological Society 68: 303-312.
  • Watson DW, Stringham SM, Denning SS, Washburn SP, Poore MH, Meier A. 2002. Managing the horn fly (Diptera: Muscidae) using an electric walk-through fly trap. Journal of Economic Entomology 95: 1113-1118.

Reka Bentuk Web: Don Wasik, Jane Medley
Publication Number: EENY-490
Publication Date: April 2011. Reviewed: April 2020.


What kind of fly is this? - Biologi

CATATAN: Also consult the grading rubric when writing your paper. If the rubric contradicts any of the guidelines presented on this page, the rubric takes precedence over this page.

The text should be double-spaced. Information in tables and the Literature Cited can be single-spaced.

NOTE that you are not writing all of the sections of a primary literature paper. For example, you will NOT write an Introduction or a Materials and Methods sections. However, to help you better understand how your paper should sound, please follow this link to a sample Materials and Methods section. Read this document and try to mimic its quality and tone while writing the required sections for your paper.

Watch plagiarism: copying someone else's words, even if you reference their work, is haram. You must put everything into your own words, and then if those ideas that you are describing are someone else's, you also must cite the reference from which those ideas came. Do not quote someone's words as you might do in a history or literature paper scientists don't do that in standard research papers.

Consult the Communication in Biological Sciences website for two methods of citing references, choose one of those two, and consistently and correctly use them throughout your paper.

However, YOU should read through both the initial and final drafts of your paper before handing them in. Critiquing your own work is very difficult, but it is a skill that will serve you well no matter what you end up doing.

Keep in mind that the writing and flow of your paper is important. Simply stringing together all of the items listed below for each section is NOT ENOUGH.


What kind of fly is this? - Biologi

This is the fly that really gets up your nose in the middle of winter. there you are sat in your conservatory on a beautiful sunny day in early January..the sun is really quite warm under the glass. when to your horror you notice that there are numerous flies walking around the panes which make up the roof of the conservatory. "can't be" you say to your self, it's winter. Well sorry folks but it can be and it's Cluster fly.

Biologi:
These insects, sometimes called "attic flies", often become pests in homes. They usually appear in late fall or early winter and again on warm, sunny days in early spring. They buzz around the home and gather in large numbers at windows, often in rooms that are not regularly used. The cluster fly is a little larger than the common housefly and moves sluggishly.

It can be recognised by the short, golden coloured hairs on its thorax, the part of the body to which the legs and wings are attached. The larvae, or maggots, of cluster flies develop as parasites in the bodies of earthworms. The adult flies emerge in late summer and early autumn and seek protected places to spend the winter. In many cases, this is within the walls, attics and basements of homes.

A pair of Cluster Flies

Insect screens on windows offer no protection from the flies because they crawl in the home through small openings in the walls of the building. These same overwintering flies get into rooms during the winter and spring months entering through window pulley holes, around the baseboards and through other small openings in walls.

Rawatan:
As these type of flies tend to overwinter in roof-spaces, a good treatment is to release insecticidal smoke generators into the roof space. As the smoke settles a very thin film of insecticidal dust covers all the surfaces and when the fly cleans itself it ingests the insecticide and dies. Depending on the size of the roof-space depends on the number of generators used. Safety aspects should be observed

1. Ring the Fire Brigade . there will always be some passer-by who will see smoke coming out of your roof slates and will report the fact without asking you first. if a fire engine turns up for no reason you will be charged for the false call-out.
2. Always
sit the smoke generators on a slate or a tin lid or something which is fire proof. We don't want to tell the fire brigade not to come and then end up having to call them anyway.
3.
If you are using more than one generator, make sure that you ignite the ones furthest from the roof access first you don't want to breathe the smoke which is emitted. and you want to be able to see your way back to the roof access . REMEBER SAFETY AT ALL TIMES.

As well as the smoke treatment, there other treatments which will help. Again these must be carried out with a total regard for safety. people tend to forget that when they use fly spray they should work their way out of the room, leaving that room for a least an hour to allow the fine droplets to sink to the floor. Experiments have shown that droplets will hang in the air for at least 45 minutes, leaving 15 minutes as an added safety factor. The same applies if you use dusting powders, which are very fine, like talcum powder, and will also hang in the air. You must remember that if spray kills flies, then it isn't going to be particularly healthy if you breathe it. IF YOU HAVE LUNG COMPLAINTS OR PROBLEMS LIKE ASTHMA THEN DON'T HANDLE OR USE INSECTICIDES IN WHATEVER FORMS.

1. You can treat the glass windows in your conservatory or whatever, but no matter what anyone tells you there will be a slight smear effect, even with the cleanest of insecticides. What you can do is to spray the frames only which will sometimes be enough.
2. If you have sash windows. you know those windows which slide up and down and have pulley wheels at the top. well this is a favourite access point for the flies as they come out of the cavity wall. Treat these types of places with dusting powder. DON'T FORGET TO WEAR A MASK. and leave the treated room for at least an hour.
3. If your house has South facing external walls which are painted white, or are very light coloured, you will probably find that a lot of flies will bask on these walls as the light colour will reflect the heat nicely and insects need heat to be really active. You can treat these walls with an insecticide as well but realistically you would need a gallon sprayer to do the job. This would also cut down on the problems experienced in the house. BUT REMEMBER. if you spray insecticides externally not only will you kill the flies, but none target species as well.
4. If the problem is bad then you should really employ a pest control company. Here again you need to be careful, don't let them talk you into a contract for 94 visits a year. a little exaggeration. usually a problem site can be kept under control with 4 visits per annum and at the most 6.
5. If you are unsure then go back to the main fly page and email me. please ensure that you provide as much information as you can.

Back to main fly page


Flesh Flies

Adult flesh flies are rarely problems as disease carriers, and pose little threat to human or livestock health. These pests eat nasty stuff, but they do not bite people.

Larvae and Disease

Flesh fly larvae have been known to burrow from wounds into the healthy flesh of livestock. Some species can cause intestinal infections in humans who consume food contaminated with flesh fly larvae. The pests can transmit organisms they pick up at their unsanitary feeding sites. Some examples of diseases transmitted by flesh flies include:

The presence of this pest and their preferred sources of food can add to the time and efforts that must be directed to removing decaying matter from the homeowner&rsquos property.

Signs Of Infestation

If flies are developing inside, you may see a large number of them suddenly appear. When pests such as rodents, birds, or other wildlife infest homes and die in wall voids or attics, odors and the appearance of flesh flies are often the first signs of a problem.

How Do I Get Rid of Flesh Flies?

Flesh fly prevention and control comprises both exterior and, if necessary, interior procedures. The first step in a control program is to contact your pest management professional for assistance. Your pest management professional will positively identify the offending pest, conduct an inspection and then develop an integrated pest management plan (IPM) to resolve the problem. The key components of a flesh fly IPM plan include:

  • Pengenalan: Since not all flies have the same behavior and habitat, it is important to correctly identify the offending insect so that an effective and efficient IPM program can be put into place.
  • Inspection: Your pest management professional&rsquos inspection will provide the information and observations needed to develop the proper IPM plan.
  • sanitasi: Keep the property clean and get rid of all sources that provide flesh flies a suitable development habitat.
  • Pengecualian: Seal and repair screens, holes, gaps, and any other entryway that flesh flies may use to enter the home.
  • Traps: Illuminate traps to attract and capture flies.
  • Baits: Using chemical products to treat fly resting places, using chemical fly baits and using aerosol products.

Behavior, Diet, & Habit

These pests are sometimes among the first insects to arrive at a dead animal carcass and are similar to blow flies in biology and habits. Also, forensic investigators may use the development of flesh fly larvae in a carcass or corpse to help determine time of death.

Apa yang mereka makan?

These materials attract flesh flies and provide the ideal food source for the pests as well as a place to lay their eggs:

  • Carrion
  • Decaying feces
  • Organic waste
  • Blow fly larvae larvae
  • Grasshopper nymphs

Not commonly found in the home, flesh flies frequently infest industrial buildings like meat processing and packing facilities. Adult flesh flies don't bite humans, but they do feed on liquid substances, and may infest wounds, carrion, and excrement.

Geographic Range

Flesh flies are worldwide in distribution and are found in most regions of the United States.

Life Cycle

While the life cycle of flesh flies varies by species and location, generally the flies overwinter in their pupal stage within temperate climates and emerge as adults in the spring. Soon after becoming adults, they mate and the female flesh fly may lay eggs. More likely she will deposit 20-40 larvae that have hatched within her body which she directly lays on the carrion, feces, or rotting plant materials. A single female can produce hundreds of eggs during her lifetime.

Flesh fly larvae feed for 3 or 4 days and become pupae that burrow into nearby soil. After about 10 to 15 days, they will emerge as adults. Flesh flies go through several generations each year. Depending on the species, eggs may hatch within 24 hours and the entire life cycle of the fly may be completed within 1-2 weeks.


Why fruit flies are so crucial to research

The world around us is full of amazing creatures. My favorite is an animal the size of a pinhead, that can fly and land on the ceiling, that stages an elaborate (if not beautiful) courtship ritual, that can learn and remember… I am talking about the humble fruit fly, Drosophila melanogaster. By day, a tiny bug content to live on our food scraps. By night, the superhero that contributes to saving millions of human lives as one of the key model systems of modern biomedical research.

Fruit flies entered the laboratory almost through the back window a little more than 100 years ago. The excitement was still fresh after rediscovery of Gregor Mendel’s work on the genetics of peas in 1900. It was an outlandish notion at the time that Mendel’s simple laws of inheritance could apply even to animals. To test this revolutionary idea, scientists were looking for an animal they could keep easily in the lab and reproduce in large numbers.

Thomas Hunt Morgan struck gold when he decided to use the fruit fly as a model. He and his students pushed this prolific little animal to great success. They furthered Mendel’s work to discover that genes are located on chromosomes, where they are arranged, in Morgan’s words, like “beads on a string” – a breakthrough that was recognized with the Nobel prize in 1933. With the success of Morgan’s “flyroom,” the humble fruit fly was set on its way to becoming one of the leading models in modern biology, contributing vast amounts of knowledge to many areas – including genetics, embryology, cell biology, neuroscience. Additional fly Nobel prizes were awarded in 1946, 1995, 2006 and 2011.

A tiny fly stands in for us in basic research

If you ask a geneticist, humans are brothers to mice and just first cousins to flies, sharing 99% and 60% of protein-coding genes, respectively. Our anatomy and physiology are also related, so that we can use these laboratory animals to design powerful experiments, hoping what we find will be of significance to animals and humans alike. It’s undeniable that the research on animal models – such as nematodes, flies, fish and mice – has contributed immensely to what we know about our own body and as a result is helping us tackle the diseases that plague us. On this front, the services of the fruit fly will certainly be required for some time to come.

A recent renaissance in neuroscience is also bringing the fly to the forefront of our efforts to understand the brain. One of the things we least understand is how our own brain produces our emotions and behavior. Scientists are naturally attracted by the unknown, making this one of the most exciting open frontiers in biology. Perhaps, our brain, the ultimate Narcissus, cannot resist the temptation to study itself. Can the humble fly really contribute to our understanding of how our own brain works?

The fruit fly brain is a miracle of miniaturization. It deals with an incredible flow of sensory information: an obstacle approaching, the enticing smell of overripe banana, a hot windowsill to stay away from, a sexy potential mate. And it does this literally on-the-fly, as the little marvel is computing suitable trajectories around the room. Yet the fly brain is composed of only about 100,000 neurons (compared with nearly 100 billion for human beings) and can fit easily through the eye of the finest needle.

The relatively small number of cells is a key advantage for brain mapping, and large efforts are under way to label, trace and catalog every single neuron in the fly brain. Combine this with the unique wealth of information on the genetics of this little animal, and you will see how we are now able to design incredibly powerful experiments in which we alter the “software” (that is, introduce specific changes in the genome) to create animals with unique and predictable changes in the “hardware” (the brain circuits) to ask questions about brain function.

Following this playbook are recent experiments demonstrating, for example:

  • how sleep enhances memory formation (yes, even in flies!)
  • how a few sexually dimorphic neurons in the male fly brain promote male-vs-male fights
  • how specific ‘moonwalker’ neurons in the brain control backward walking
  • how the brain processes simple hot and cold stimuli to keep this little animal away from danger (my own area of research)
  • dan banyak lagi.

Of course, we can do these kinds of experiments in a number of animal models. But the unique advantage of the fly is that we can pinpoint every single neuron that’s important for a particular response or behavior, precisely map how they connect to each other and silence or activate each one to figure out how the whole thing works.

Don’t forget the flies

Just a few weeks back, Chicago hosted the Genetics Society of America’s annual “fly meeting,” bringing together thousands of fly scientists from around the world. One of the topics discussed was that, in this tough economic climate, funding cuts to public agencies are disproportionately hurting research on fruit flies in favor of more “translational” approaches – that is, research that has more immediate practical applications.

It’s worth remembering that neither Mendel nor Morgan expected that their work could have a direct impact on medicine. Yet when, hopefully soon, we manage to “cure” cancer – a genetic disease kecemerlangan setanding – they should be among the very first people receiving a thank you note from humanity.

Flies still have a lot to contribute to our understanding of all aspects of biology. As with much basic research, the direct benefits from this work may be around the corner, or may take a little longer to find. It would be a big mistake to curb fruit fly research now that the flies are just getting warmed up to tackle some of the most interesting questions in biology.

Artikel ini pada asalnya diterbitkan di The Conversation. Publication does not imply endorsement of views by the World Economic Forum.

Author: Marco Gallio is an Assistant Professor of Neurobiology at Northwestern University.

Image: Flies are seen at Jakarta’s main garbage dump at Bantar Gebang district. REUTERS/Beawiharta.


Blow flies may be the answer to monitoring environment in a non-invasive manner

INDIANAPOLIS -- They say you are what you eat that’s the case for every living thing, whether it’s humans, animals, insects, or plants, thanks to stable isotopes found within.

Now a new study explores these stable isotopes in blow flies as a non-invasive way to monitor the environment through changes in animals in the ecosystem. The work by IUPUI researchers Christine Picard, William Gilhooly III, and Charity Owings, was published April 14 in PLOS ONE.

A postdoctoral researcher at the University of Tennessee-Knoxville, Owings was a Ph.D. student at IUPUI at the time of the study.

“Blow flies are found on all continents, with the exception of Antarctica. Therefore, blow flies are effectively sentinels of animal response to climate change in almost any location in the world,” said Gilhooly, who said the disruptions of climate change has increased the need to find new ways to monitor animals’ environments without disturbing them.

The multidisciplinary research between the biology and earth science departments began more than four years ago to answer a fundamental ecological question: “What are they (blow flies) eating in the wild,” Owings asked. “We know these types of flies feed on dead animals, but until now, we really had no way of actually determining the types of carcasses they were utilizing without actually finding the carcasses themselves.”

“Stable isotopes are literally the only way we could do that in a meaningful way,” Picard added.

Stable isotopes include carbon, nitrogen, hydrogen, oxygen, among others. Stable isotopes are found in the food we eat, and become a part of us.

“When we eat a hamburger, we are getting the carbon isotopes that came from the corn that the cow was fed. Flies do the exact same thing,” said Gilhooly.

Picard and Owings set out to collect blow flies in Indianapolis, Yellowstone National Park and the Great Smoky Mountains.

School of Science alumna, Charity Owings, Ph.D., collecting flies in the Great Smoky Mountains.

“Collecting flies is easy: have rotten meat, can travel,” said Picard. “That is it, we would go someplace, open up our container of rotten meat, and the flies cannot resist and come flying in. Collections never took longer than 30 minutes, and it was like we were never there.”

Once the flies were collected, they were placed in a high-temperature furnace to convert the nitrogen and carbon in the blow fly into nitrogen gas and carbon dioxide gas. Those gases were then analyzed in a stable isotope ratio mass spectrometer, which shows slight differences in mass to reveal the original isotope composition of the sample.

“Nitrogen and carbon isotopes hold valuable information about diet. Animals that eat meat have high nitrogen isotope values, whereas animals that eat mainly plants have low nitrogen isotope values,” said Gilhooly. “Carbon isotopes will tell us the main form of sugar that is in a diet. Food from an American diet has a distinct isotope signature because it has a lot of corn in it, either from the corn fed to domesticated animals or high fructose corn syrup used to make most processed foods and drinks. This signal is different from the carbon isotopes of trees and other plants. These isotope patterns are recorded in the fly as they randomly sample animals in the environment.”

Identifying the stable isotopes allowed the researchers to determine if the blow flies were feeding on carnivores or herbivores when they were larvae.

Christine Picard, Ph.D., collects blow flies to study changes in animal ecosystems.

“With repeated sampling, one can keep an eye on animal health and wellness,” said Picard. “If the flies indicate a sudden, massive increase in dead herbivores --and knowing what we know right now that typically the herbivores are readily scavenged and not available for flies, that could tell us one of two things: herbivores are dying yet the scavengers don’t want anything to do with them as they may be diseased, or there are more herbivores than the carnivores/scavengers, and perhaps the populations of these animals has decreased.”

In Indianapolis, the majority of the blow fly larvae feed on carnivores. The researchers speculate this is because of the large number of animals being hit and killed by cars, making carcass scavenging less likely and more available to the blow flies to lay their eggs.

However, they were surprised by their findings in the national park sampling sites, where the larvae fed on carnivores instead of the herbivores, despite the herbivores' greater numbers. They speculate the competition is higher to scavenge for the larger herbivore carcasses and not readily accessible for the blow flies.

In addition, Picard, Gilhooly and Owings observed the impact of humans on animals. The carbon isotopes from the flies found the presence of corn-based foods in Indianapolis, which was expected, but also in the Great Smoky Mountains. With the Smokies being the most visited park in the country, opportunistic scavengers have greater access to human food.

This wealth of information provided by the blow flies will be fundamental to detecting changes within the ecosystem,” said Picard.

Charity Owings, Ph.D., collecting flies in Yellowstone National Park.

“This research has the potential to revolutionize the way biologists investigate important global issues, especially in the era of climate change,” said Owings. “Researchers will no longer be restricted to finding animals themselves, which is a daunting task the flies can easily find the animals and then can be ‘called in’ by scientists.”

In addition to providing a real-time early warning system for tracking ecosystem change in response to climate change, the distribution of blow flies makes this approach useful in almost any location.

“Compared to other approaches, the relative ease of collecting the flies and measuring their isotopes means that ecosystem monitoring efforts can be rapidly deployed in any environmentally sensitive region,” said Gilhooly.

This multidisciplinary research, which is making a meaningful contribution to science, wouldn’t have happened without having the genuine interest to learn more about the other’s science.

“This work would never have happened without that ability to share passions, and learn from each other. I am very thankful for Bill’s expertise, and I have learned tons from him, but also, we have learned more about our fly, and now have the ability to take this knowledge and apply it to current, immediate problems,” said Picard.

“We've got great teamwork that combines the different scientific skills needed for this study. The crazy thing about this work is that it's so interdisciplinary that it was difficult to convince others that the idea would work. I'm glad we stuck with it and were able to demonstrate the utility of this new method,” said Gilhooly.

About IU Research

IU's world-class researchers have driven innovation and creative initiatives that matter for 200 years. From curing testicular cancer to collaborating with NASA to search for life on Mars, IU has earned its reputation as a world-class research institution. Supported by $854 million last year from our partners, IU researchers are building collaborations and uncovering new solutions that improve lives in Indiana and around the globe.


Tonton videonya: Minuscule - Top DépartOn Your Marks, Get Set.. Season 1 (Februari 2023).